MAB5300
Przeciwciało przeciw dopaminie, klon K56A
clone K56A, Chemicon®, from mouse
Zaloguj sięWyświetlanie cen organizacyjnych i kontraktowych
About This Item
Kod UNSPSC:
12352203
eCl@ss:
32160702
NACRES:
NA.41
Produkt MAB5300 nie jest obecnie dostępny w sprzedaży w Twoim kraju Skontaktuj się z zespołem ds. pomocy technicznej
Polecane produkty
pochodzenie biologiczne
mouse
Poziom jakości
forma przeciwciała
purified immunoglobulin
rodzaj przeciwciała
primary antibodies
klon
K56A, monoclonal
reaktywność gatunkowa
rat
producent / nazwa handlowa
Chemicon®
metody
immunohistochemistry: suitable
izotyp
IgG
Warunki transportu
dry ice
docelowa modyfikacja potranslacyjna
unmodified
informacje o genach
rat ... Slc6A3(24898)
Specyficzność
Dopamina.
Reaktywność krzyżową określono za pomocą testu ELISA poprzez eksperymenty konkurencji z następującymi związkami:
Związek Reaktywność krzyżowa
Dopamina-G-BSA 1
L-DOPA-G-BSA 1/10,000
Tyrozyna-G-BSA 1/36,000
Tyramina-G-BSA 1/>50,000
Noradrenalina-G-BSA 1/>50,000
Oktopamina-G-BSA 1/>50,000
Adrenalina-G-BSA 1/>50,000
Dopamina 1/>50,000
Skróty:
(G) Glutaraldehyd
(BSA) Albumina surowicy bydlęcej
Reaktywność krzyżową określono za pomocą testu ELISA poprzez eksperymenty konkurencji z następującymi związkami:
Związek Reaktywność krzyżowa
Dopamina-G-BSA 1
L-DOPA-G-BSA 1/10,000
Tyrozyna-G-BSA 1/36,000
Tyramina-G-BSA 1/>50,000
Noradrenalina-G-BSA 1/>50,000
Oktopamina-G-BSA 1/>50,000
Adrenalina-G-BSA 1/>50,000
Dopamina 1/>50,000
Skróty:
(G) Glutaraldehyd
(BSA) Albumina surowicy bydlęcej
Immunogen
Dopamina-Gluteraldehyd-BSA.
Zastosowanie
Immunohistochemia: 1:500-1:2,500 przy użyciu swobodnie pływających skrawków techniką PAP na obszarach dopaminergicznych szczura.
Optymalne rozcieńczenia robocze muszą zostać określone przez użytkownika końcowego.
PROTOKÓŁ wykrywania dopaminy metodą immunohistochemiczną/cytochemiczną. Przykład dla mózgu szczura.
1. ROZTWORY DO PRZYGOTOWANIA - Roztwory należy przygotować w zależności od potrzeb.
Roztwór A: 0,1M kakodylan, 10g/L metabisiarczyn sodu, pH 6,2.
Roztwór B: 0,1M kakodylanu, 10g/L metabisiarczynu sodu, 3-5% aldehydu glutarowego, pH 7,5.
2. PERFUZJA SZCZURA - Szczur jest znieczulany pentobarbitalem sodu lub Nembutalem i perfundowany wewnątrzsercowo przez aortę za pomocą pompy z roztworem A (30 ml): 150-300 ml/min, roztworem B (500 ml): 150-300 ml/min.
3. POST FIXATION: 15 do 30 minut w roztworze B, a następnie 4 płukania w 0,05M Tris z 8,5 g/L metabisiarczynem sodu, pH 7,5 (roztwór C).
4. SKROJENIE TKANKI: Można użyć skrawków z wibrotomu lub kriostatu.
5. ETAP REDUKCJI: Skrawki są redukowane roztworem C zawierającym 0,1M borohydryku sodu przez 10 minut. Skrawki są płukane 4 razy w roztworze C bez borohydratu sodu.
6. ZASTOSOWANIE PRZECIWCIAŁA DOPAMINY: Użyć końcowego rozcieńczenia 1:2,500-1:10,000 w roztworze C zawierającym 0,1% Triton X100 i 2% surowicy niespecyficznej. Inkubować 12 skrawków na 2 ml rozcieńczonego przeciwciała przez noc w temperaturze +4°C. Następnie płukać skrawki trzy razy po 10 minut w roztworze C. (Należy pamiętać, że przeciwciało może być użyteczne w wyższym rozcieńczeniu. Należy to sprawdzić, aby zminimalizować możliwość wystąpienia wysokiego tła. Ponadto należy pamiętać, że zmiana systemu buforowania, jak wskazano w protokole, może zmienić tło i rozpoznawanie przeciwciała). Specyficzna reakcja jest następnie ujawniana przez procedurę PAP.
6. DRUGIE PRZECIWCIAŁO: Inkubować skrawki z rozcieńczeniem 1:50 do 1:200 koziego przeciwciała anty-króliczego w roztworze B zawierającym 1% niespecyficznej surowicy przez 3 godziny w temperaturze 20°C lub 2 godziny w temperaturze 37°C. Następnie przepłukać skrawki 3 razy po 10 minut roztworem B.
7. PAP: Inkubować skrawki z odpowiednim rozcieńczeniem antyperoksydazy peroksydazowej (dla metody free floating) w roztworze B zawierającym 1% niespecyficznej surowicy przez 1-2 godziny w temperaturze 37°C. Następnie płukać skrawki 3 razy po 10 minut w roztworze B.
8. WIZUALIZACJA: Kompleksy antygen-przeciwciało są wizualizowane przy użyciu DAB-4-HCl (25 mg/100 mL) (lub innego chromogenu) w 0,05M Tris i filtrowane; dodawany jest 0,05% nadtlenek wodoru. Inkubować skrawki przez 10 minut w temperaturze pokojowej. Zatrzymać reakcję, przenosząc skrawki do 5 ml 0,05M Tris. Przemyć tkankę roztworem D stosując 2, 10-minutowe płukania. Zamontować skrawki na szkiełkach pokrytych chromem i aluminium. Suszyć przez noc w temperaturze 37°C. Nawodnić skrawki stosując konwencjonalne procedury histologiczne. Nałożyć szkiełko nakrywkowe przy użyciu środków do szybkiego montażu.
Wyłącznie do użytku badawczego; nie do użytku diagnostycznego.
Optymalne rozcieńczenia robocze muszą zostać określone przez użytkownika końcowego.
PROTOKÓŁ wykrywania dopaminy metodą immunohistochemiczną/cytochemiczną. Przykład dla mózgu szczura.
1. ROZTWORY DO PRZYGOTOWANIA - Roztwory należy przygotować w zależności od potrzeb.
Roztwór A: 0,1M kakodylan, 10g/L metabisiarczyn sodu, pH 6,2.
Roztwór B: 0,1M kakodylanu, 10g/L metabisiarczynu sodu, 3-5% aldehydu glutarowego, pH 7,5.
2. PERFUZJA SZCZURA - Szczur jest znieczulany pentobarbitalem sodu lub Nembutalem i perfundowany wewnątrzsercowo przez aortę za pomocą pompy z roztworem A (30 ml): 150-300 ml/min, roztworem B (500 ml): 150-300 ml/min.
3. POST FIXATION: 15 do 30 minut w roztworze B, a następnie 4 płukania w 0,05M Tris z 8,5 g/L metabisiarczynem sodu, pH 7,5 (roztwór C).
4. SKROJENIE TKANKI: Można użyć skrawków z wibrotomu lub kriostatu.
5. ETAP REDUKCJI: Skrawki są redukowane roztworem C zawierającym 0,1M borohydryku sodu przez 10 minut. Skrawki są płukane 4 razy w roztworze C bez borohydratu sodu.
6. ZASTOSOWANIE PRZECIWCIAŁA DOPAMINY: Użyć końcowego rozcieńczenia 1:2,500-1:10,000 w roztworze C zawierającym 0,1% Triton X100 i 2% surowicy niespecyficznej. Inkubować 12 skrawków na 2 ml rozcieńczonego przeciwciała przez noc w temperaturze +4°C. Następnie płukać skrawki trzy razy po 10 minut w roztworze C. (Należy pamiętać, że przeciwciało może być użyteczne w wyższym rozcieńczeniu. Należy to sprawdzić, aby zminimalizować możliwość wystąpienia wysokiego tła. Ponadto należy pamiętać, że zmiana systemu buforowania, jak wskazano w protokole, może zmienić tło i rozpoznawanie przeciwciała). Specyficzna reakcja jest następnie ujawniana przez procedurę PAP.
6. DRUGIE PRZECIWCIAŁO: Inkubować skrawki z rozcieńczeniem 1:50 do 1:200 koziego przeciwciała anty-króliczego w roztworze B zawierającym 1% niespecyficznej surowicy przez 3 godziny w temperaturze 20°C lub 2 godziny w temperaturze 37°C. Następnie przepłukać skrawki 3 razy po 10 minut roztworem B.
7. PAP: Inkubować skrawki z odpowiednim rozcieńczeniem antyperoksydazy peroksydazowej (dla metody free floating) w roztworze B zawierającym 1% niespecyficznej surowicy przez 1-2 godziny w temperaturze 37°C. Następnie płukać skrawki 3 razy po 10 minut w roztworze B.
8. WIZUALIZACJA: Kompleksy antygen-przeciwciało są wizualizowane przy użyciu DAB-4-HCl (25 mg/100 mL) (lub innego chromogenu) w 0,05M Tris i filtrowane; dodawany jest 0,05% nadtlenek wodoru. Inkubować skrawki przez 10 minut w temperaturze pokojowej. Zatrzymać reakcję, przenosząc skrawki do 5 ml 0,05M Tris. Przemyć tkankę roztworem D stosując 2, 10-minutowe płukania. Zamontować skrawki na szkiełkach pokrytych chromem i aluminium. Suszyć przez noc w temperaturze 37°C. Nawodnić skrawki stosując konwencjonalne procedury histologiczne. Nałożyć szkiełko nakrywkowe przy użyciu środków do szybkiego montażu.
Wyłącznie do użytku badawczego; nie do użytku diagnostycznego.
Przeciwciało antydopaminowe, klon K56A wykrywa poziom dopaminy i zostało opublikowane i zatwierdzone do stosowania w IH.
Research Category
Neuroscience
Neuroscience
Research Sub Category
Neurotransmitters & Receptors
Neurotransmitters & Receptors
Postać fizyczna
Format: Oczyszczony
Oczyszczona immunoglobulina. Płyn zawierający 50% glicerolu.
Przechowywanie i stabilność
Przechowywać w temperaturze -20°C w nierozcieńczonych podwielokrotnościach przez okres do 6 miesięcy od daty otrzymania.
Informacje prawne
CHEMICON is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Oświadczenie o zrzeczeniu się odpowiedzialności
Unless otherwise stated in our catalog or other company documentation accompanying the product(s), our products are intended for research use only and are not to be used for any other purpose, which includes but is not limited to, unauthorized commercial uses, in vitro diagnostic uses, ex vivo or in vivo therapeutic uses or any type of consumption or application to humans or animals.
Ta strona może zawierać tekst przetłumaczony maszynowo.
Nie możesz znaleźć właściwego produktu?
Wypróbuj nasz Narzędzie selektora produktów.
Kod klasy składowania
12 - Non Combustible Liquids
Klasa zagrożenia wodnego (WGK)
WGK 2
Temperatura zapłonu (°F)
Not applicable
Temperatura zapłonu (°C)
Not applicable
Certyfikaty analizy (CoA)
Poszukaj Certyfikaty analizy (CoA), wpisując numer partii/serii produktów. Numery serii i partii można znaleźć na etykiecie produktu po słowach „seria” lub „partia”.
Masz już ten produkt?
Dokumenty związane z niedawno zakupionymi produktami zostały zamieszczone w Bibliotece dokumentów.
Yuanzhong Xu et al.
eNeuro, 4(3) (2017-06-01)
Leptin receptors (LepRs) expressed in the midbrain contribute to the action of leptin on feeding regulation. The midbrain neurons release a variety of neurotransmitters including dopamine (DA), glutamate and GABA. However, which neurotransmitter mediates midbrain leptin action on feeding remains
Emma van der Woude et al.
Brain, behavior and evolution, 89(3), 185-194 (2017-05-10)
Trichogramma evanescens parasitic wasps show large phenotypic plasticity in brain and body size, resulting in a 5-fold difference in brain volume among genetically identical sister wasps. Brain volume scales linearly with body volume in these wasps. This isometric brain scaling
Jitte Groothuis et al.
Cell and tissue research, 379(2), 261-273 (2019-08-24)
An extreme reduction in body size has been shown to negatively impact the memory retention level of the parasitic wasp Nasonia vitripennis. In addition, N. vitripennis and Nasonia giraulti, closely related parasitic wasps, differ markedly in the number of conditioning
Forebrain dopamine neurons project down to a brainstem region controlling locomotion.
Ryczko, D; Gratsch, S; Auclair, F; Dube, C; Bergeron, S; Alpert, MH; Cone, JJ; Roitman et al.
Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA null
Philippe-Antoine Beauséjour et al.
The Journal of comparative neurology, 528(1), 114-134 (2019-07-10)
Detection of chemical cues is important to guide locomotion in association with feeding and sexual behavior. Two neural pathways responsible for odor-evoked locomotion have been characterized in the sea lamprey (Petromyzon marinus L.), a basal vertebrate. There is a medial
Active Filters
Nasz zespół naukowców ma doświadczenie we wszystkich obszarach badań, w tym w naukach przyrodniczych, materiałoznawstwie, syntezie chemicznej, chromatografii, analityce i wielu innych dziedzinach.
Skontaktuj się z zespołem ds. pomocy technicznej
