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Determinação de amônio no solo

Determinação fotométrica usando o método azul de indofenol após extração com uma solução de cloreto de cálcio

Introdução

O amônio (NH4+) é uma das principais fontes de nitrogênio para a nutrição das plantas e é formado com a mineralização da matéria orgânica decomposta.1 Estudos mostram que o amônio é a fonte naturalmente preferida de nitrogênio para o crescimento das plantas.2 Com a crescente demanda global por produtos alimentícios orgânicos, os agricultores estão recorrendo ao uso de composto e esterco. Embora os fertilizantes de amônio prontos tenham concentrações definidas do cátion e dos compostos relacionados, é importante analisar os compostos e o esterco para verificar a concentração exata de amônio. As primeiras fases da decomposição são responsáveis pela perda de nitrogênio na forma de amônia e há uma perda natural de amônio na proporção em que o composto amadurece.3 O excesso de amônio também foi relatado como tóxico em plantas superiores.4  

Na instrução de aplicação, detalha a análise fotométrica de amônio em solos, usando o método azul de indofenol, após sua extração com solução de cloreto de cálcio. Depois da extração da amostra e em uma solução altamente alcalina, o nitrogênio amoniacal está presente quase que totalmente como amônia, que reage com íons hipoclorito para formar monocloramina. Este, por sua vez, reage com um composto de fenol para formar um derivado de indofenol azul que é determinado fotometricamente.

Reagentes, instrumentos e materiais

Kit/reagentes de teste de amônio

Para a medição, é necessário um dos seguintes kits de teste Spectroquant®

  • Teste celular de amônio Spectroquant® (1.14739)
  • Teste celular de amônio Spectroquant® (1.14544)*
  • Teste celular de amônio Spectroquant® (1.14558)
  • Teste celular de amônio Spectroquant® (1.14559)
  • Teste de amônio Spectroquant® (1.14739)
  • Teste de amônio Spectroquant® (1.14752)
  • Teste de amônio Spectroquant® (1.00683)

*Não é compatível com o Move 100

Instrumentos 

É necessário um dos seguintes fotômetros Spectroquant®:

  • Espectofotômetro (173016) Spectroquant® VIS Prove 100 
  • Espectofotômetro (173017) Spectroquant® UV/VIS Prove 300
  • Espectofotômetro (173018) Spectroquant® UV/VIS Prove 600

Software de transferência de dados

Pacote de software opcional (Y.11086) Spectroquant® Prove Connect to LIMS para transferir seus dados para um sistema LIMS existente.

Acessórios de instrumentos

  • Célula retangular de 10 mm (1.14946) e/ou
  • Células retangulares de 20 mm (1.14947) e/ou
  • Células retangulares de 50 mm (1.14944

Outros reagentes e acessórios

  • Cloreto de cálcio di-hidratado para análise (1.02382)
  • Água para análise (1.16754)
  • Carvão ativado para teste de solo 
  • Filtro dobrado

Método experimental

Preparação de reagentes

Dissolva 3,68 g de cloreto de cálcio di-hidratado para análise com 1 l de água para preparar uma solução de cloreto de cálcio 0,025 mol/l.

Preparação das amostras

  • Em um frasco de vidro, adicione 50 g de amostra naturalmente úmida, sem pedras grossas, com 100 ml da solução de cloreto de cálcio. 
  • Adicione 1 espátula - ponta cheia de carvão ativado para testes de solo e agite o frasco fechado em uma máquina de agitação por 1 hora (alternativa: agite em um béquer). 
  • Aguarde a solução sedimentar e faça uma filtração com um filtro dobrado. 
  • Para determinar o teor de água, seque uma amostra semelhante até atingir o peso constante no forno de secagem a 105 °C. Não é recomendado secar a amostra antes da quantificação devido à rápida alteração nas formas de nitrogênio. 
  • A análise deve ser realizada rapidamente. 
  • Armazene a amostra em sacos plásticos em temperatura ambiente, os valores da análise alteram após um curto período.

Análise

Determine com os kits de teste mencionados acima.

Cálculo

Teor de amônio em mg/kg NH4+ = valor de análise em mg/l NH4+ x 2 

Materiais
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*O produto 1.14544 não é compatível com o Move 100.

Referências

1.
Loqué D, Yuan L, Kojima S, Gojon A, Wirth J, Gazzarrini S, Ishiyama K, Takahashi H, von Wirén N. 2006. Additive contribution of AMT1;1 and AMT1;3 to high-affinity ammonium uptake across the plasma membrane of nitrogen-deficient Arabidopsis roots. 48(4):522-534. https://doi.org/10.1111/j.1365-313x.2006.02887.x
2.
Sasakawa H, Yamamoto Y. 1978. Comparison of the Uptake of Nitrate and Ammonium by Rice Seedlings. Plant Physiol.. 62(4):665-669. https://doi.org/10.1104/pp.62.4.665
3.
Clemson University Regulatory Services, South Carolina - Compost Interpretation | Public | Clemson University, South Carolina: Available from: https://www.clemson.edu/public/regulatory/ag-srvc-lab/compost/index
4.
Britto DT, Kronzucker HJ. 2002. NH4+ toxicity in higher plants: a critical review. Journal of Plant Physiology. 159(6):567-584. https://doi.org/10.1078/0176-1617-0774
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