Přejít k obsahu
Merck
DomůqPCRKvantitativní protokol PCR s barvivem SYBR® Green I

Kvantitativní protokol PCR s barvivem SYBR® Green I

Protokoly kvantitativní PCR

Ačkoli kvantitativní PCR využívá stejný základní koncept jako tradiční PCR, reakce se liší tím, že amplikony jsou obvykle menší a jsou detekovány nepřímo pomocí dalšího barviva nebo značené sondy či primeru.

V Průvodci technologiemi PCR byly podrobně popsány potřebné komponenty a požadavky na kontrolu kvality pro experimenty qPCR. S ohledem na ně je níže uveden protokol, který lze použít jako základní šablonu pro qPCR obsahující barvivo SYBR Green I vázající DNA, který je možné upravit a použít jako validaci pro sadu primerů. Optimalizace koncentrace primerů a teploty žíhání pomocí barviva SYBR Green I jsou podrobněji popsány v Optimalizaci koncentrace primerů a Optimalizaci primerů pomocí teplotního gradientu.

Vybavení

  • Pipety dávkující objemy od <1 do 200 μl
  • Stolní mikrocentrifuga
  • Přístroj pro kvantitativní PCR
  • Kryt s laminárním průtokem pro nastavení PCR (volitelný)

Příslušenství

Tabulka P4-6APrůvodce výběrem PCR směsi SYBR Green.
Tabulka P4-6B
Tabulka P4-7Koncentrace referenčního barviva a kompatibilita s přístroji (při použití qPCR činidel se samostatným referenčním barvivem).

Metoda

Testy prováděné v KiCqStart ReadyMix jsou optimální při použití vyšší koncentrace primerů než při konvenční PCR. V níže uvedených protokolech je použita konečná koncentrace 450 nM. Bylo zjištěno, že tato koncentrace je optimální pro několik nezávislých testů. 

1.      Umístěte všechny složky reakce na led.
2. Vložte všechny složky reakce na led.     Smíchejte a krátce odstřeďte, aby se obsah shromáždil na dně zkumavky.
3.     Připravte dostatečné množství master mixu pro provedení všech vzorků ve dvou opakováních.
       a. Zahrňte duplikáty negativních kontrol bez šablony (NTC).
       b. Vypočítejte množství reagencií, které je třeba smíchat. Přidejte 10 % objemu, abyste zohlednili chybu pipetování.
       c. Dobře promíchejte, aby nevznikaly bubliny.

Tabulka P4-8Reakční směs pro reagencie KiCqStart.

4.    Nastavení reakcí:
       a. Pro reakce NTC přidejte do reakčních zkumavek 5 μl vody.
       b. Pro experimentální reakce přidejte do reakčních zkumavek 5 μl roztoku cDNA/gDNA.
       c. Přidejte 5 μl roztoku cDNA/gDNA. Vizuálně zkontrolujte, zda všechny zkumavky nebo jamky obsahují vzorek na dně ve správném objemu.
       d. Opatrně alikvotujte 15 μl reakční master směsi do každé qPCR zkumavky nebo jamky destičky.
       e. Uzavřete zkumavky nebo utěsněte PCR destičku a označte ji (podle požadavků přístroje). (Ujistěte se, že označení nezakrývá
         dráhu excitačního/detekčního světla přístroje.)
       f. Reakce dobře promíchejte a v případě potřeby roztočte.

5. Reakce se v případě potřeby roztočí.    Spusťte vzorky podle protokolu cyklování v Tabulce P4-9 a opakujte průběh kroků 1-3 po dobu 40 cyklů.
       (Poznámka: Tyto podmínky jsou specifické pro cyklické protokoly FAST).

Tabulka P4-9Podmínky rychlého cyklování PCR.

Poznámka: Použijte standardní protokol disociační křivky (sběr dat)

6.     Pokyny pro analýzu dat naleznete v příručce k přístroji qPCR a Analýza dat 

Materiály
Loading
Chcete-li pokračovat, musíte se přihlásit.

Abyste mohli pokračovat ve čtení, přihlaste se nebo vytvořte účet.

Nemáte účet?