直接檢測 Southern 或 Western 印迹的明膠阻斷緩衝液
Product No. G7663
產品說明
為了特異性檢測固定在固體支持物上的抗原或目標分子,支持物上未被佔用的結合位點必須被阻斷,以防止探針和檢測分子的結合。否則,核酸探針、抗體和檢測酵素會隨意與膜上的目標分子結合。阻斷非特異蛋白結合位點可以用各種蛋白和去垢劑溶液來完成;但是,阻斷溶液必須與檢測系統相容。明膠阻斷緩衝液與各種檢測系統相容,包括生物素、螢光素和 DIG 檢測系統。目標分子可固定於硝酸纖維、尼龍及電荷改性尼龍膜上。
試劑
明膠封鎖緩衝液以乾粉形式提供,重組後可提供 1 公升的封鎖緩衝液。
Reagents Required but not Provided
我們會在適當的地方提供產品編號。
- 磷酸緩衝鹽水 (PBS) 含 0.05% (v/v) Tween-20 (PBS-T), 產品編號 P3563
- 蛋白探針或抗體
- 0.1 M Tris, 0.1M NaCl, pH 9.5 (用於 Southern 印跡)
製備說明
將一個容器中的明膠封裝緩衝液溶於 800 mL 去離子水中。內容物溶解後,加入去離子水至 1000 mL,攪拌混合。
儲存/穩定性
粉末於室溫下儲存。重組後,請將明膠阻斷緩衝液儲存於 2-8 °C,以避免細菌污染。溶液可在重組後於 2-8 °C下保存一週。
程序
A. Southern印迹阻断、探针和检测的推荐程序:
注意: 在敏感的系統中,指紋會顯示在膜上。Use powder-free gloves at all times.
Avoid the use of forceps with ridges, as contact points also tend to show up.
- 將標記的核酸轉移到硝酸纖維膜上,或交聯到尼龍膜或帶正電荷的尼龍膜上後,用明膠封鎖緩衝液在環境溫度下孵育 60 分鐘(0.6 mL/cm2),或在 37 °C 溫度下輕輕攪動 30 分鐘。此外,請注意,阻斷可在 2-8 °C 下過夜完成。
注意: 如果要使用標記的核酸探針來檢測未標記的核酸目標,則必須根據優先程序,先用合適的單鏈 DNA 阻斷膜。
- 現在可以用蛋白結合物或對核酸上的標籤有特異性的抗體來探測膜。
蛋白結合物或抗體應該用含 0.05% (v/v) 吐溫-20 (PBS-T) 的磷酸緩衝生理鹽水稀釋。當使用 鏈霉親和素-鹼性磷酸酶(產品編號:S2890)時,建議初始濃度為1-10 ng/mL。S5512) 作為蛋白結合物。
- 用蛋白結合物或抗體溶液孵育膜(0.6 mL/cm2)在环境温度下轻柔搅拌30-60分钟。
- 用PBS-T清洗膜,轻柔搅拌,3-5次,每次5分钟。
- 如果蛋白結合物使用鹼性磷酸酶作為酶,則必須在 PBS-T 洗滌後用 0.1 M Tris、0.1 M NaCl、pH 9.5 洗滌三次,每次三 分鐘。Tris 洗滌可除去任何殘留的磷酸鹽,並將膜平衡至鹼性 pH,以進行鹼性磷酸酶的檢測。如果蛋白結合物使用辣根過氧化酶作為酵素,則在 PBS-T 洗滌後,膜就可以接觸底物了。
- 現在可以按照製造商的說明,將膜接觸發色或化學發光底物。 Western印迹阻断、探针和检测的推荐程序:
- 将感兴趣的蛋白质转移到硝酸纤维素膜或尼龙膜后,用明胶阻断缓冲液孵育60分钟(0.6 mL/cm2)在環境溫度下孵育 60 分鐘,或在 37 °C 下溫和攪動 30 分鐘。此外,請注意阻斷可在 2-8 °C 下過夜完成。
- 用明膠阻斷緩衝液稀釋一抗。一抗的常見稀釋比例為 1:1000,但也可能有所不同。稀釋可能從 1:100 到 1:100,000 或更高。研究人員必須決定最佳稀釋係數。
- 將膜與一抗(0.6 mL/cm2)在2-8 °C溫和攪拌下孵育 1-16 小時。
- 用 PBS-T 洗膜三至五次,每次五分鐘,輕輕攪拌。
- 在明膠阻斷緩衝液中稀釋二抗-酶結合物,孵育膜 30-120 分鐘。孵育結束後,輕輕攪動膜,用 PBS-T 洗膜 5-6 次,每次 5 分鐘。
- 現在可以按照製造商的說明將膜暴露於發色或化學發光底物上。 Suggestions for colorimetric detection of labeled nucleic acid:
- 膜應暴露於比色底物中,直到看到陽性信號,但當背景開始形成時,應停止反應。
- 對於比色過氧化酶底物,可移除底物並將膜移至 0.1% SDS 的 PBS 或 TBS(Tris buffered saline)溶液中。
- 对于碱性磷酸酶底物,可通过去除底物并将膜转移到 0.3 M 磷酸鈉,pH 5.5.
D. Suggestions for chemiluminescent detection of labeled nucleic acid:
- 暴露於底物後,應吸掉多餘的底物,並將膜轉移到固體支持物上。建議將膜轉移到比膜本身稍大的頁面保護器上。然後將支撐好的膜放入可熱封的袋子中。用玻璃試管或吸管在膜上滾動,輕輕按壓,使膜和塑料袋之間的氣泡平滑。封好袋子,擦掉袋子外面多餘的基材。
- 最初,應使用 1 分鐘的曝光時間,但是,如果未見信號,可將膜暴露於膠片上更長時間。如果看到過多信號,請使用技術上盡可能短的曝光時間。有關其他提示,請參閱故障排除指南。
E. Western blot 檢測固定蛋白的建議:
- 酵素-抗體結合物的稀釋取決於後續檢測所用的底物,研究人員應該對其進行優化。對於發色底物,一般稀釋指引為 1:5000,對於化學發光底物,一般稀釋指引為 1:50,000。
- 為了驗證第二抗體的品質,請進行"空白"膜,其中省略第一抗體。
- 用於檢測抗原的抗體通常可以通過將膜浸泡在含有100 mM glycine, pH 2.3的緩衝液中30分鐘並加以攪拌來去除。這不是一個普遍適用的程序;有些抗原會從膜上解離,因此後續的探測會很微弱或不存在。
如果可能的話,許多研究人員喜歡平行製備膜,從而避免這個 "剝離"步驟的不確定性。
- 膜應暴露於比色底物中,直到看到陽性信號,但當背景開始形成時,應停止反應。
- 将感兴趣的蛋白质转移到硝酸纤维素膜或尼龙膜后,用明胶阻断缓冲液孵育60分钟(0.6 mL/cm2)在環境溫度下孵育 60 分鐘,或在 37 °C 下溫和攪動 30 分鐘。此外,請注意阻斷可在 2-8 °C 下過夜完成。
故障排除指南 | ||
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問題問題 | 可能原因 | 補救方法 |
無訊號 | 無目標存在 | 若膜上沒有標示核酸,則無法檢測。 |
沒有目標蛋白質存在 | 使用 Ponceau S 溶液(產品編號 P7170)顯示膜上的蛋白質,驗證轉移。 | |
過度阻斷 | 如果阻斷試劑的濃度過高,可能發生信號遮蔽。可以稀釋 1:1 到 1:3 來降低濃度。 | |
使用化學發光系統曝光時間不足 | 第一次曝光應為 1 分鐘。如果未見信號,則曝露更長時間。我們建議嘗試 5 分鐘、10 分鐘等。如果看到過多信號,請嘗試盡可能短的曝光時間(短至 1 秒),而不要使用盒式曝光 | |
酵素結合物可能已經失去酵素活性 | 確定酵素結合物是否具有活性。 | |
高背景 | 太多抗體或蛋白結合物 | 進行抗體或蛋白結合物的滴度測試,直到獲得可接受的信噪比。 |
不適當的阻斷試劑 | 增加阻斷試劑的濃度,用二分之一建議容量的水製備試劑。此外,某些抗體可能會與某些阻斷試劑產生交叉反應。 | |
不適當的阻斷方案 | 增加阻斷時間和提高阻斷溫度至 37 °C。 | |
不適當的清洗方案 | 增加清洗次數。 | |
在比色底物溶液中過度培養 | 減少染色時間。 對於比色底物,應將膜暴露於比色底物中,直到看到陽性信號,但當背景開始形成時,應停止反應:孵育 5-10 分鐘或當顯示條帶時。所需時間可增加或減少,但不應超過 60 分鐘。 停止反應: 對於鹼性磷酸酶底物,使用 0.3 M 磷酸鈉溶液,pH 5.5。 對於辣根過氧化酶底物,使用 0.1% 疊氮化鈉與 1% SDS 在 TBS(Tris buffered saline)或 PBS(posphate buffered saline)中清洗膜。 | |
不適用的膠片 | 改用指定用於化學發光檢測的膠片,如 Kodak Biomax Light、MS 和 MR。 | |
外來光點 | 聚集的蛋白質或抗體結合物 | 過濾結合物,用0.2微米醋酸纖維素過濾器過濾,或以10,000 x g 離心10分鐘,然後使用上清液。 |
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JWM 7/11/03
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