細胞凍結的技巧與訣竅
AIM
評估細胞
收穫細胞(程序 3 和 4)
將細胞重新悬浮於新鮮培養基
移除樣品並計算細胞數量(程序 6)
離心剩餘的培養物 150 x g 5 分鐘
將細胞重新悬浮於冷凍培養基
移取 1 mL 等分細胞
轉移至液氮儲存容器
材料
- 冷凍培養基(通常為 90% FBS、10% DMSO(C6039))
- 70%(v/v)酒精無菌水(793213)
- PBS 不含 Ca2+/Mg2+ (D8537)
- 0.05% Trypsin/EDTA in HBSS, without Ca2+/Mg2+ (T3924)
- DMSO (D2650)
設備
重點
- 最常用的低溫保護劑是二甲基亞砜 (DMSO),但是,這並不適合所有細胞株,例如:HL60,DMSO 不適合 HL60。例如,HL60 使用 DMSO 誘導分化。在這種情況下,應使用甘油等替代物(有關正確冷凍保護劑的詳細資料,請參閱 ECACC 資料表)。
- 上述推薦的 ECACC 冷凍培養基被證實是適用於大多數細胞類型的良好通用培養基。另一種常用的冷凍培養基配方是:70% 基礎培養基、20% FBS、10% DMSO,但這可能不適合所有類型的細胞。
- 培養物必須健康且處於生長的對數期。
- 冷卻速度可能會有所不同,但一般來說,每分鐘-1 °C到-3 °C的冷卻速度適合大多數細胞培養物。
- Frosty先生系統的另一種選擇是Taylor Wharton被動式冷凍器,將安瓿放置在Dewar頸部的液氮蒸汽中。該系統可讓安瓿逐漸下降,從而降低溫度。
- 作為最後的手段,如果沒有其他設備,可以將安瓿放在一個隔熱良好的盒子(如邊厚至少 1 厘米的聚苯乙烯盒子)中,在 -80 °C 下放置一夜。在整個冷凍過程中,必須確保盒子保持直立。一旦凍結,安瓿應轉移至液氮儲存容器的氣相層,並記錄位置。
- 如果使用涉及-80 °C冷凍箱的凍結方法,則必須為細胞株凍結分配一個區域,以免樣品不慎被移除。如果這種情況發生在凍結過程的關鍵部分,那麼存活率和回收率將受到不利影響。
圖 2.DMSO 瓶
圖 3.Frosty 容器先生
程序
- 使用倒置顯微鏡觀察培養物以評估細胞密度,並確認沒有細菌和真菌污染物。收穫生長對數期的細胞。
- 如前所述,使用胰蛋白酶/EDTA 將黏附和半黏附細胞懸浮,並在至少等於胰蛋白酶量的新鮮培養基中重新懸浮。
- 取出一小部分細胞(100-200μL)並進行細胞計數。
- 將剩餘的培養物以 150 x g 離心 5 分鐘。
- 將細胞以每毫升 2-4x106 cells 的濃度重新混悬於冷凍培養基。
- 用移液管將 1mL 等分的細胞移入標有細胞系名稱、通過號、批號、細胞濃度和日期的低溫保護安瓿中。
- 冷凍的安瓿應轉移至液氮儲存容器的氣相層,並記錄位置。
Bright-Line是Cambridge Instruments, Inc.的商標。
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