Przejdź do zawartości
Merck
Strona głównaSpektrometria masowa białekOpracowanie prostego i szybkiego protokołu trawienia do przygotowywania próbek proteomicznych

Opracowanie prostego i szybkiego protokołu trawienia do przygotowywania próbek proteomicznych

Zhiyun Cao, Amber Henry, Judy Boland, Nicolas Caffarelli, Jeffrey Turner, Kevin Ray

Abstrakt

Wiarygodne i powtarzalne wyniki analiz proteomicznych z wykorzystaniem spektrometrii mas w dużym stopniu zależą od solidnego przygotowania próbki. Procesy przygotowania próbek są często uciążliwe i zazwyczaj obejmują denaturację chemiczną, redukcję i alkilację, wymianę buforu i całonocne trawienie proteazowe próbki białka. Te długotrwałe, złożone protokoły wymagają 3-4 godzin pracy laboratoryjnej, a następnie całonocnej inkubacji, potencjalnie wprowadzając zmienność wyników. Przygotowanie próbki wspomagane filtrem (FASP) i inne alternatywne protokoły mogą przyspieszyć przepływ pracy, ale wiążą się ze zwiększonymi kosztami i ograniczonym zastosowaniem. W tym badaniu zidentyfikowaliśmy warunki pozwalające na szybkie trawienie trypsyną w podwyższonych temperaturach, które dały wiarygodne, powtarzalne wyniki w czasie krótszym niż 2 godziny na szerokiej gamie podłoży.

Przebieg pracy

Opracowanie prostego i szybkiego protokołu trawienia do przygotowywania próbek proteomicznych

Rysunek 1. Porównanie protokołu prostego i szybkiego trawienia do przygotowania próbek proteomicznych z tradycyjnym trawieniem

TCEP (646547), CAA (C0267), IAA (A3221), dezoksycholan sodu (30970), Rapid Digest Buffer (składnik Rapid Digest Kit, MSKT0002), SOLu-Trypsin (EMS0004),&kwas mrówkowy (695076), albumina surowicy bydlęcej (P0914), mioglobina (M1882), filtr Microcon (MRCF0R030). K562 i CHO zostały wyprodukowane we własnym zakresie.

Wyniki: Oczyszczone białka

Trawienie mioglobiny

Wyniki trawienia oczyszczonych białek mioglobiny

Rysunek 2.Wyniki trawienia oczyszczonych białek mioglobiny

Trawienie albuminy

Trawienie oczyszczonych białek

Rysunek 3.Trawienie oczyszczonych białek

Trawienie pojedynczych białek przy użyciu tradycyjnego protokołu nocnego (O/N) lub szybkiego, z lub bez redukcji i alkilacji (R/A). Wykorzystane parametry bazy danych obejmują brak pominiętego rozszczepienia i 80% pewność dla peptydu.

Góra: Mioglobina, bez cysteiny
Dół: Albumina surowicy bydlęcej, 6% cysteiny

Szybkie trawienie poszczególnych białek dało porównywalne pokrycie sekwencji w porównaniu do trawienia nocnego. Białka o wysokiej zawartości cysteiny wymagają redukcji i alkilacji w celu wydajnego trawienia.

Wyniki: Białka złożone - CHO

W rozwiązaniu

Tradycyjny vs szybki

Tradycyjny vs szybki

Przygotowywanie próbek wspomagane filtrem (FASP)

Tradycyjny vs szybki

Rysunek 4.Białka złożone - białka komórek gospodarza CHO

Tradycyjne i szybkie trawienie białek wydzielanych przez jajniki chomika chińskiego (CHO), z i bez wspomaganego filtrem przygotowania próbki (FASP). Białka były denaturowane, redukowane i alkilowane w tradycyjnych trawieniach, ale nie w szybkich trawieniach. Szybkie trawienie dało podobną liczbę peptydów i białek jak tradycyjne trawienie nocne bez potrzeby denaturacji lub R/A.

Wyniki: Złożone białka - lizat K562

Lizaty komórek K562 przygotowano z użyciem SDS. Mocznik jest używany z FASP do usunięcia detergentu przed trawieniem. Białka zostały strawione przy użyciu tradycyjnej metody nocnej z R/A lub szybkiej metody bez R/A.

Obydwie metody trawienia dają podobną liczbę identyfikatorów peptydów i białek. Trawienie daje spójne wyniki w replikowanych preparatach. Zaobserwowano dobrą korelację między dwiema metodami dla zidentyfikowanych białek.

Tradycyjny vs szybki

Rysunek 5.Białka złożone - lizat komórek K562

W porównaniu z tradycyjnymi protokołami, metoda szybkiego trawienia zidentyfikowała podobną liczbę peptydów i białek w złożonych mieszaninach, bez potrzeby chemicznej denaturacji lub redukcji i alkilacji. Ogólnie rzecz biorąc, wyniki te sugerują, że włączenie buforu do szybkiego trawienia i podwyższonej temperatury może zmniejszyć wymagania dotyczące pracy i czasu przygotowania próbki do analiz proteomicznych za pomocą spektrometrii mas.

Wnioski

  • Trawienie złożonych próbek białkowych w ciągu 2 godzin przy użyciu buforu do szybkiego trawienia i podwyższonej temperatury daje wyniki podobne do tradycyjnego trawienia nocnego
  • Tradycyjne i szybkie trawienie daje podobną liczbę identyfikacji peptydów i białek oraz podobne pokrycie sekwencji
  • Szybkie trawienie jest kompatybilne z redukcją i alkilacją, która może być wymagana dla białek o wysokiej zawartości cysteiny
  • Redukcja i alkilacja jest opcjonalna dla złożonych próbek proteomicznych
Materiały
Loading
Zaloguj się, aby kontynuować

Zaloguj się lub utwórz konto, aby kontynuować.

Nie masz konta użytkownika?