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ホーム大麻(カンナビス)中のテルペン:プロファイルと重要性ホップおよび大麻中のテルペンのヘッドスペースSPME-GC/MS分析

ホップおよび大麻中のテルペンのヘッドスペースSPME-GC/MS分析

Katherine K. Stenerson, Principal Scientist

 Article from Analytix Reporter - Issue 3

本アプリケーションでは、ヘッドスペース-SPMEを用いて、 GC/MS により、一般的なホップおよび大麻の中に存在する数種のテルペン類の分析を行いました。

テルペン類は、ある種の植物によって合成される小さい分子です。テルペンの名前は、これらの化合物を高濃度で含むテルペンチンに由来します。テルペンの分子は、イソプレン単位を頭部―尾部まで結合した構造をしています(図1)。その上で、構造中におけるそれらのイソプレン単位の数で分類がされています(表1)。テルペン類の構造は環状または開放型の可能性があり、二重結合および水酸基、カルボニル基あるいは他の官能基を含んでいるものもあります。CとH以外の元素を含むテルペンはテルペノイドと呼ばれます1

イソプレン単位

図1.1単位あたり

分類イソプレン単位の数
モノテルペン2
セスキテルペン3
ジテルペン4
トリテルペン6
テトラテルペン8
表1.テルペン類の分類

テルペン類は植物由来の精油中に存在し、植物あるいはその精油に特徴的な香りを発することが多くあります。例えば、d-リモネンは、レモン、オレンジ、キャラウェーや他の植物油中に見いだされるものですが、レモンのような香りを持ちます。精油は、その成分であるテルペンやテルペノイドとともに、不安神経症、うつ病、不眠症などの状態を緩和するためのアロマテラピーとして知られる医療に用いられています2。ここからさらに、これらの化合物を含有する植物を利用して、油、茶、強壮剤などの製品の製造が行われています。

テルペンのプロファイルを用いた植物の同定

大麻草(アサあるいはマリファナ)(cannabis sativa )は、モノ、セスキ、ジ、トリおよびその他のテルペノイド起源の雑多な化合物を含む100種類超のテルペンおよびテルペノイドを含有しています3。テルペンのプロファイルは必ずしも大麻試料の地理的起源を示すものではありませんが、さまざまな試料に共通するオリジンを決める鑑識用途に使用できます4。さらに、特定のテルペンの存在量が異なっているために明確に異なる香りと風味を持つ、別の大麻種が開発されました5。ホップ(普通のホップ)(Humulus lupulus )と大麻はどちらもアサ科の植物6なので、それぞれが含有するテルペン類には類似点があります。テルペン類により、どちらの植物製品も感覚器官を刺激する特徴的な特性を持ち、大麻の場合は、つぼみを加熱あるいは蒸発させたときに特徴的な香りを発します7

実験

乾燥大麻の試料は、国立衛生研究所にある米国国立薬物乱用研究所、化学生理学システム研究部門のプログラムディレクターであるHari H. Singh博士の厚意で入手しました。その試料の抽出種は不明でした。品種が不明のホップの花はオンラインで購入しました。ペレット化したカスケードとUSゴールディングホップ変種は、地元の自家醸造用品店で購入しました。クロマトグラフィー分離はEquity-1キャピラリーGCカラムで実施し、同定は保持指数とスペクトルライブラリーとの照合によって行いました。最終的な分析条件を図中に示します。

SPME法の最適化

乾燥ホップ花(10 mLバイアルに0.2 g)試料を使ってSPME法を開発しました。最初のSPMEパラメーターは以前に公開した研究に基づくものでした8。本分析でのGC/MS結果を図2に示します。最初の一連のパラメーターでは、100μmのPDMSファイバー、1 gの試料サイズ、抽出前に室温での60分平衡化を使用しました。試料サイズをその後0.2 gに減らし、平衡温度を40ºCに上げました。この温度上昇により平衡時間は60分から30分に短縮されましたが、感度の損失はありませんでした(図3および4)。使用した最初の抽出時間は20分で、10分に短縮した場合も評価しましたが、感度の損失が見られたので抽出時間は20分のままとしました。次いで、DVB/CAR/PDMSファイバーを評価しました(図5)。予想通り、このファイバーで多く抽出されたのは軽い方の化合物で、これはMSスペクトル照合により短鎖アルコールおよび酸と同定されました。

乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析(100 μm PDMSファイバー、1 g試料)

図2.乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析(100 μm PDMSファイバー、1 g試料)

試料/マトリックス:粉砕したホップの花1 g
SPMEファイバー:100 µm PDMS (57341-U)
試料平衡化:60分、室温
抽出:20分、ヘッドスペース、40℃
脱着プロセス:3分間、270℃
ファイバーポストベーク:3分間、270℃
カラム:Equity™-1, 60 m x 0.25 mm I.D., 0.25 µm (28047-U)
オーブン:60℃(2分)、5℃/分で275℃まで(5分)
注入温度:270 ℃
検出器:MSD
MSDインターフェース:300 ℃
スキャン範囲:フルスキャン、m/z 50~500
キャリアガス:ヘリウム、1 mL/分、一定流量
ライナー:0.75 mm ID SPME
乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析

図3.乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析(100 μm PDMSファイバー、0.2 g試料)

以下を除き図2と同じ条件:
試料/マトリックス:粉砕したホップの花0.2 g
乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析、試料平衡化温度上昇

図4.乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析、試料平衡化温度上昇(100 μm PDMSファイバー、0.2 g試料)

以下を除き図2と同じ条件:
試料/マトリックス:粉砕したホップの花0.2 g
試料平衡化:30分間、40℃
乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析、試料平衡化温度上昇

図5.乾燥ホップ花のヘッドスペースSPME-GC/MS分析、試料平衡化温度上昇(DVB/CAR/PDMSファイバー、0.2 g試料)

以下を除き図2と同じ条件:
試料/マトリックス:粉砕したホップの花0.2 g
SPMEファイバー:50/30 µm DVB/CAR/PDMS (57298-U)
試料平衡化:30分間、40℃
試料/マトリックス:粉砕したホップの花0.2 g
試料平衡化:30分間、40℃

GC/MSを用いたテルペン類の同定

最適化したSPME法でDVB/CAR/PDMSファイバーを用いて、ホップと大麻の試料を分析しました。ピーク同定は、MSスペクトルをWileyおよびNISTのライブラリーにある基準スペクトルを検索にかけて同定しました。確認同定は保持指数に基づいて行いました。保持指数は、同じGC条件で分析したn-アルカン標準品を用い、各試料で同定された化合物に対して計算しました。このデータを公開された値(表2および3)と比較し、図6および7に示すように最終同定を割り当てました。

ホップ試料中のテルペン類

乾燥ホップ花試料(図5)のテルペンプロファイルには、ホップおよびホップ油の代表的な芳香化合物であるβ-ミルセン、フムレンおよびカリオフィレンが圧倒的に多く見られるはずでした9。カリオフィレンは同定されましたが、β-ミルセンとフムレンはライブラリー検索で検出するのに十分な濃度では存在していませんでした。これは試料の状態か、または分析したホップの実際の品種によるのかもしれません。というのも、テルペンプロファイルはさまざまなホップの品種によって異なることが知られているからです10。分析したホップ花の品種は、包装に記述がなかったので不明です。比較のため、ペレット化したもう二種のホップ品種を粉砕して分析を行いました。

これらの試料は緑色で、乾燥花よりはるかに特徴的なホップのような香りを発していました。これらの試料を分析したところ、いずれにも、高濃度のβ-ミルセン、カリオフィレンおよびフムレンという特徴的なテルペンプロファイルが見られました(図6)。SPME法で、2種類のホップ品種間のテルペンプロファイルの違いを検出できました。例えば、カスケードホップではファルネセン(ピーク18)が同定されましたが、USゴールディング試料ではシグナルが小さすぎて確認できませんでした。カスケードホップのファルネセン濃度は全オイルの3~7%と予想されますが、USコーディングでは1%未満のはずです13

大麻試料中のテルペン類

大麻試料(図7)中で同定されたテルペン類を表3に示します。プロファイルは、以前に行った乾燥大麻の分析で見られたものと同様でした4,8図7のピーク1~27(ピーク7を除く)は、モノテルペン類およびモノテルペノイドでした。後から溶出するピークは、セキテルペン類およびカリオフィレン酸化物(セキテルペノイド)で構成されていました。最も多かったテルペンはカリオフィレンでした。この化合物が圧倒的に多かったのは、試験した特定の大麻種によるものか、試験した試料の性質(乾燥試料)によるものと思われました。以前の研究では、乾燥によってこの化合物の濃度が他のテルペン類およびテルペノイドより著しく増加することが示されていました4。そのため、揮発性が高いモノテルペン類およびテルペノイドの濃度が下がると予想され、これはある程度確認されました。モノテルペン類およびテルペノイドのなかで最も多かったのはα-ピネンとd-リモネンでした。

ピークNo.RT(分)名称RI(計算)RI(文献)参考文献
18.58ヘキサナール  —  78011
212.84α-ピネン  939  94211
313.28カンフェン  953  95411
413.716-メチル-5-ヘプテン-2-オン  966  96811
514.1β-ピネン  979  98111
614.41β-ミルセン  988  98611
715.32サイメン1018102011
815.65d-リモネン1030103011
915.98β-オシメン1041103811
1016.72cis-リナロールオキサイド1066106811
1117.49リナロール1089109211
1221.86ゲラニオール1239124311
1325.28酢酸ゲラニル1363136411
1425.85α-イランゲン138413738
1525.97α-コパエン1388139811
1627.22カリオフィレン1437142811
1727.4trans-α- ベルガモテン + 不明1445144312
1817.63trans-β- ファルネセン145414508
1928.11フムレン1473146511
2028.41γ-ムウロレン1484147511
2128.45γ-セリネン1486147212
2228.68ゲラニルイソブチラート1495149311
2328.79β-セリネン149914878
2428.94α-ムウロレン1505150011
2528.97α-セリネン1507150112
2629.31γ-カジネン1521151811
2729.37カラメネン1524151811
2829.45Δ-カジネン1527152411
2930.93酸化カリオフィレン159015848
3031.5酸化フムレン1614159912
表2.ホップペレット中のテルペン類。MSスペクトルライブラリー照合および保持指数で同定。
ホップペレットのヘッドスペースSPME-GC/MS分析。

図6.ホップペレットのヘッドスペースSPME-GC/MS分析。

ピーク溶出順は表2に記載。
以下を除き図2と同じ条件:
試料/マトリックス:粉砕したホップの花0.5 g(ホップペレット)
SPMEファイバー:50/30 µm DVB/CAR/PDMS(57298-U)
試料平衡化:30分間、40℃
乾燥大麻のヘッドスペースSPME-GC/MS分析

図7.乾燥大麻のヘッドスペースSPME-GC/MS分析

ピーク溶出順は表3に記載。
以下を除き図2と同じ:
試料/マトリックス:粉砕した乾燥大麻0.5 g
SPMEファイバー:50/30 µm DVB/CAR/PDMS (57298-U)
試料平衡化:30分間、40℃
ピークNo.RT(分)名称RI(計算)RI(文献)参考文献
1  8.57ヘキサナール  —  —
210.05ヘキセン-1-オール  —  —
310.892-ヘプタノン  —  —
412.56α-ツジェン  928  93811
512.86α-ピネン + 不明  939  94211
613.27カンフェン  953  95411
713.696-メチル-5-ヘプテン-2-オン  966  96811
814.09β-ピネン  979  98111
914.27β-ミルセン  984  98611
1015.09δ-3-カレン1010101512
1115.2α-テルピネン1014101212
1215.29サイメン1018102011
1315.6d-リモネン1028103011
1416.42γ-テルピネン1056105711
1516.6trans-サビネンハイドレート1062107811
1616.72cis-リナロールオキサイド1066106811
1717.43リナロール1087109211
1818.04d-フェンキルアルコール1107111011
1918.82trans-ピノカルべオール1135113412
2019.59ボルネオールL1161116411
2119.811,8-メタノインデン-4-オール116811738
2219.81p-シメン-8-オール1168117212
2319.92テルピネン-4-オール1172118511
2420.22α-テルピネオール1181118511
2524.2ピペリテノン1322132012
2624.76酸化ピペリテノン1344135212
2725.85α-イランゲン138413738
2825.97α-コパエン1388139811
2926.76γ-カリオフィレン1419140312
3027.01α-サンタレン1429142812
3127.16カリオフィレン1435142811
3227.36trans-α- ベルガモテン + 不明1443144312
3327.49α-グアイエン144814418
3427.56trans-β- ファルネセン1451144612
3527.98フムレン1467146511
3628.17アロアロマデンドレン1475147811
3728.25α-クルクメン1478147912
3828.75β-セリネン149714878
3928.97α-セリネン150714978
4028.97β-ビサボレン150715068
4129.13α-ブルネセン1514151312
4230.12セリナ-3,7(11)-ジエン1556154212
4330.94酸化カリオフィレン1590159512
4431.5酸化フムレン1614159912
4532.48カリオフィラ-3, 8(13)-ジエン-5-オールA1658165612
表3.乾燥大麻中のテルペン類。MSスペクトルライブラリー照合および保持指数で同定。

結論

簡単なヘッドスペースSPME-GC/MS法を用いてホップおよび大麻のテルペン/テルペノイドプロファイルを分析しました。その方法で、どちらの試料にも特徴的なテルペン類およびテルペノイドの検出ができ、さまざまなホップ品種間の違いを見分けることができました。

関連製品
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参考文献

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