Ugrás a tartalomra
Merck
KezdőlapFejlett génszerkesztésGenomszerkesztés növényekben CRISPR/Cas9 segítségével

Genomszerkesztés növényekben CRISPR/Cas9 segítségével

Sikeres ZFN-indukált géncélzást már 2003-ban publikáltak. Azóta a célzott genomszerkesztési technológia gyorsan fejlődött, és kereskedelmi forgalomban is elérhetővé vált. Legutóbb a CRISPR/Cas9 útvonal felfedezése gyorsította fel az érdeklődést ezen a területen, új lehetőségeket nyitva a kutatás és fejlesztés előtt. Bár a CRISPR útvonalat baktériumokban azonosították egy feltételezett adaptív immunrendszer részeként, gyorsan adaptálták az eukarióta genomok módosításának céljára. Bár az olyan eszközök, mint a ZFN-ek megteremtették a mai genomszerkesztés alapjait, ennek az alapító technológiának és a hozzá hasonlóknak vannak korlátai: a ZFN-ek fehérje:DNS kölcsönhatása bonyolulttá teszi a tervezésüket, a ZFN-expressziós konstrukció összeállítása időigényes, és a ZFN célzási lehetőségei számos A-T-ben gazdag növényi genomban korlátozottak. A CRISPR útvonal, ahogyan azt az eukarióta genomszerkesztéshez átvették és módosították, számos ilyen akadályt leküzd: a genomi célpont megtalálása RNS:DNS kölcsönhatásra támaszkodik, az ehhez a kötődési eseményhez szükséges felismerő szekvencia egy könnyen módosítható 18-20 bázispár, és a nukleáz kötődés egyetlen követelménye a célpont melletti NGG jelenléte. A CRISPR/Cas9 növényekben történő alkalmazásáról szóló első jelentések, amelyekben tranziens expressziós próbákat tanulmányoztak Agrobacterium segítségével, 2013-ban jelentek meg. A CRISPR/Cas9 technológiát sikeresen alkalmazták modellnövényekben (Nicotiana benthamianaArabidopsis thaliana) és haszonnövényekben (rizs, búza), és a lista egyre bővül. 

  • CRISPR/Cas9: Mi ez és hogyan működik?
  • A CRISPR/Cas9 genomszerkesztésre való alkalmazásának előnyei
  • Egyszerűsített munkafolyamat: CRISPR/Cas9 növényekben
  • >Készen álló Cas9 és vezető RNS (gRNS) expressziós plazmidok monokotikus és dikotikus növényekhez
  • Egyedi CRISPR/Cas9 növényi termékek

CRISPR/Cas 9: Mi az és hogyan működik?

CRISPR a Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (klaszterezett, szabályos szóközű rövid palindromos ismétlődések) rövidítése. A II. típusú prokarióta CRISPR "immunrendszer" felfedezése lehetővé tette egy olyan RNS-vezérelt genomszerkesztő eszköz kifejlesztését, amely egyszerűen, könnyen és gyorsan alkalmazható. A CRISPR/Cas9 rendszer egyetlen monomer fehérjéből és egy kiméra RNS-ből áll. A gRNS-ben lévő 20 nt szekvencia szekvencia-specifikus jelleget kölcsönöz, a hasítást pedig a Cas9 fehérje közvetíti. A gRNS-alapú hasítás alapja a cél-DNS-szekvenciával való Watson-Crick bázispárosodás, ami szükségtelenné teszi az egyes célpontokhoz szükséges kifinomult fehérjeépítést. A gRNS-ben csak egy 20 nt-ot kell módosítani ahhoz, hogy megkönnyítsük egy másik célpont felismerését. 

A CRISPR/Cas9 egy Cas9 fehérjéből, egy CRISPR RNS-ből (crRNS) és egy transz-aktiváló crRNS-ből ( tracrRNS) áll. A génszerkesztési alkalmazásokban a crRNS-t és a tracrRNS-t gyakran egyetlen vezető RNS-be (sgRNS) fuzionálják. A ribonukleoprotein a crRNS vezető szekvenciával behatol a célpontba, egy 20 bp hosszúságú RNS/DNS hibridet képezve és az ellentétes DNS-szálat kiszorítva, miután találkozik egy protospacer szomszédos motívummal (PAM), például NGG-vel. A Cas9 endonukleáz ezt követően egy HNH nukleáz doménnel hasítja a komplementer DNS-szálat (célszál), és egy RuvC-szerű nukleáz doménnel a kiszorított DNS-szálat (nem célszál), kettős szálszakadás (DSB) létrehozása érdekében. A DSB gazdasejt általi, nem-homológ végcsatlakozási (NHEJ) vagy homológia irányított javítási (HDR) útvonalakon keresztül történő javítása felhasználható génkiütés létrehozására vagy specifikus genetikai módosítás bevezetésére egy DNS-donorral történő homológ rekombináció révén.

A Streptococcus pyogenes-ből származó Cas9 fehérjéből és vezető RNS-ből (gRNS) álló RNS-vezérelt endonukleázok (RGEN) testre szabhatók, mivel csak az RNS-komponenst cserélik ki, ami más génszerkesztési módszerekhez képest munka- és időmegtakarítást eredményez. Vagy Agrobacterium tumefaciens vagy az őket kódoló plazmidok transzfektálásával programozható nukleázok juttathatók növényi sejtekbe, ahol ezek a nukleázok szekvenciafüggő módon hasítják a kromoszómális célpontokat.  Az eredmény helyspecifikus DNS kettősszál-törések (DSB-k), amelyek endogén rendszerek általi javítása célzott genommódosításokat eredményez.

CRISPR genomikus célterület

A CRISPR/Cas9 használatának előnyei a genomszerkesztésben

A CRISPR/Cas9 fő előnyei az egyszerűség, a hozzáférhetőség, a költség és a sokoldalúság.

A CRISPR/Cas9 rendszer nem igényel semmilyen fehérjemérnöki lépést, így sokkal egyszerűbb több gRNS-t tesztelni az egyes célgénekhez.

A gRNS-szekvenciában csak 20 nt-ot kell megváltoztatni ahhoz, hogy más célspecificitást adjunk, ami azt jelenti, hogy a klónozásra sincs szükség.

Minden gRNS előállítható in vitro átírással, két komplementer lágyított oligonukleotid felhasználásával. Ez lehetővé teszi nagy gRNS-könyvtárak olcsó összeállítását, így a CRISPR/Cas9 rendszer nagy áteresztőképességű funkcionális genomikai alkalmazásokhoz használható.

A CRISPR/Cas9 további előnye a ZFN-ekkel és a TALEN-ekkel szemben a multiplexálás egyszerűsége. A DSB-k több helyre történő egyidejű bevezetése több gén egyidejű szerkesztésére használható.  Ez különösen hasznos lehet redundáns gének vagy párhuzamos útvonalak kiütésére. A kutatók nagy genomiális deléciókat vagy inverziókat tudnak létrehozni azáltal, hogy ugyanazon a kromoszómán két, egymástól távol eső hasadási helyet céloznak meg. A CRISPR/Cas9 rendszerrel végzett multiplex szerkesztéshez egyszerűen a monomer Cas9 fehérjére és tetszőleges számú különböző szekvenciaspecifikus gRNS-re van szükség. Ezzel szemben a ZFN-ekkel vagy TALEN-ekkel végzett multiplex szerkesztéshez külön dimer fehérjékre van szükség, amelyek minden egyes célpontra specifikusak.

A CRISPR/Cas9 rendszer képes metilált DNS-t hasítani az emberi sejtekben, ami olyan genomiális módosításokat tesz lehetővé, amelyek a többi nukleáz számára elérhetetlenek. Noha ezt nem vizsgálták kifejezetten növényekben, feltételezhető, hogy a metilált DNS hasításának képessége a CRISPR/Cas9 rendszer sajátja, és nem függ a célgenomtól.

Egyszerűsített munkafolyamat:

A növénybiotechnológia új korszakba lép a genomszerkesztési technológiák bevezetésével, amelyek lehetővé teszik a specifikus genom pontos manipulációját, ezáltal kiszorítva a véletlenszerű mutagenezis régebbi módszereit, mint az EMS mutagenezis és a g-sugárzás szekvenciák. A növényi CRISPR/Cas9 termékeket Agrobacterium-mediált növényi transzformációra vagy biolistás mikrorészecske-bombázásra vagy protoplaszt transzformációra szánják. A termékek a Streptococcus pyogenes-ből származó IIA típusú CRISPR/Cas9-en alapulnak. A natív Cas9 kódoló szekvenciát kodonoptimalizáltuk a monokotákban és dikotákban történő expresszióra. A monokot Cas9 konstrukciók monokot U6 promótert tartalmaznak az sgRNS expressziójához, a dikot Cas9 konstrukciók pedig dikot U6 promótert. A növényi szelekciós markerek közé tartozik a hígromicin B rezisztencia gén, a neomicin-foszfotranszferáz gén és a bar gén (foszfinotricin acetiltranszferáz).

A CRISPR/Cas9-mutagenizált növényi vonal létrehozásának folyamata.

A CRISPR/Cas9-mutagenizált növényi vonal létrehozásának csővezetéke. c, kontroll; m, mutagenizált; RE, restrikciós enzim. A CELI és T7E1 a felmérő vizsgálatban használt DNS-endonukleázok.

Felkész Cas9 és útmutató RNS (gRNS) expressziós plazmidok monokoták és dikoták számára
  • Növényi CRISPR/Cas9 termékeinket Növényi CRISPR/Cas9 termékekhez szánjuk.Agrobacterium-mediált növényi transzformációhoz vagy bioszisztikus mikrorészecske-bombázáshoz vagy protoplaszt transzformációhoz
  • A kodon-optimalizált Cas9 fehérjét és egy gRNS-t egyetlen vektorból fejezzük ki, és felhasználásra kész, transzfekciós minőségű DNS-ként biztosítjuk.

Az Agrobacterium-mediált transzformációhoz használt CRISPR-Cas9 konstrukciók alapvető szerkezete.

Az Agrobacterium-mediált transzformációhoz használt CRISPR/Cas9 konstrukciók alapvető szerkezete.

A CRISPR-Cas9 konstrukciók alapvető szerkezete a biolitikus vagy protoplaszt transzformációhoz.

A CRISPR/Cas9 konstrukciók alapvető szerkezete a biolitikus vagy protoplaszt transzformációhoz.

Növényi CRISPR/Cas9 terméklista

Egyedi CRISPR GUS vektorok

CRISPR NÖVÉNYELLENŐRZÉS
Loading

Hivatkozások

1.
Li J, Zhang D, Sheen J. 2015. Targeted Plant Genome Editing via the CRISPR/Cas9 Technology.239-255. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2444-8_12
2.
Ali Z, Abul-faraj A, Li L, Ghosh N, Piatek M, Mahjoub A, Aouida M, Piatek A, Baltes N, Voytas D, et al. 2015. Efficient Virus-Mediated Genome Editing in Plants Using the CRISPR/Cas9 System. Molecular Plant. 8(8):1288-1291. https://doi.org/10.1016/j.molp.2015.02.011
3.
Bortesi L, Fischer R. 2015. The CRISPR/Cas9 system for plant genome editing and beyond. Biotechnology Advances. 33(1):41-52. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2014.12.006
4.
Xing H, Dong L, Wang Z, Zhang H, Han C, Liu B, Wang X, Chen Q. 2014. A CRISPR/Cas9 toolkit for multiplex genome editing in plants. BMC Plant Biol. 14(1): https://doi.org/10.1186/s12870-014-0327-y
5.
Nekrasov V, Staskawicz B, Weigel D, Jones JDG, Kamoun S. 2013. Targeted mutagenesis in the model plant Nicotiana benthamiana using Cas9 RNA-guided endonuclease. Nat Biotechnol. 31(8):691-693. https://doi.org/10.1038/nbt.2655
6.
Shan Q, Wang Y, Li J, Zhang Y, Chen K, Liang Z, Zhang K, Liu J, Xi JJ, Qiu J, et al. 2013. Targeted genome modification of crop plants using a CRISPR-Cas system. Nat Biotechnol. 31(8):686-688. https://doi.org/10.1038/nbt.2650
7.
Li J, Norville JE, Aach J, McCormack M, Zhang D, Bush J, Church GM, Sheen J. 2013. Multiplex and homologous recombination?mediated genome editing in Arabidopsis and Nicotiana benthamiana using guide RNA and Cas9. Nat Biotechnol. 31(8):688-691. https://doi.org/10.1038/nbt.2654
8.
Feng Z, Zhang B, Ding W, Liu X, Yang D, Wei P, Cao F, Zhu S, Zhang F, Mao Y, et al. 2013. Efficient genome editing in plants using a CRISPR/Cas system. Cell Res. 23(10):1229-1232. https://doi.org/10.1038/cr.2013.114
9.
Xie K, Yang Y. 2013. RNA-Guided Genome Editing in Plants Using a CRISPR?Cas System. Molecular Plant. 6(6):1975-1983. https://doi.org/10.1093/mp/sst119
10.
Miao J, Guo D, Zhang J, Huang Q, Qin G, Zhang X, Wan J, Gu H, Qu L. 2013. Targeted mutagenesis in rice using CRISPR-Cas system. Cell Res. 23(10):1233-1236. https://doi.org/10.1038/cr.2013.123
A folytatáshoz jelentkezzen be

Az olvasás folytatásához jelentkezzen be vagy hozzon létre egy felhasználói fiókot.

Még nem rendelkezik fiókkal?