這種堅固耐用的高解析度層析介質是以 34 µm Sepharose High Performance 矩陣為基礎。由於珠子的尺寸較小,MBP 標記蛋白會以狹窄的峰值洗脫,將進一步濃縮步驟的需求降至最低。純化是在生理條件下進行,使用麥芽糖進行溫和洗提可保留目標蛋白的活性。這些溫和的條件甚至可以純化完整的蛋白質複合物。
表 A3.1 概括了糊精 Sepharose High Performance 的主要特性。 Table A3.2 summarizes the characteristics of this chromatography medium in prepacked columns.
有關再生介質和色譜柱的詳細資訊如下。
Matrix< | 堅硬、高度交聯的 6% 瓊脂糖 |
平均粒徑 | 34微米 |
配體 | 糊精 |
動態結合容量1 | 約 7 mg MBP2*-parx.7 mg MBP2*-paramyosin-δ-Sal/ml 媒介 (Mr ~70 000, 多聚體在溶液中) 大約.16 mg MBP2*-β-galactosidase/ml medium (Mr ~158 000, multimer in solution) |
Recommended flow velocity2 | ≤ 150 cm/h |
最高流速2 | < 300 cm/h< |
最大背壓2 | 0.3 MPa, 3 bar |
化學穩定性3 | 在所有常用的水性緩衝液、0.5 M NaOH(再生和清洗) |
pH 穩定性,工作範圍 短期 | > 7 2 至 13 2 至 13 |
儲存 | 2 °C 至 8 °C 於 20% 乙醇中 |
1 結合能力取決於蛋白質。
2 H2O在室溫下。
3 還原劑的存在,例如、5 mM DTT 可能會降低產率。較高的離子強度不會降低產率,因為 MBP 主要透過氫結合與糊精結合。不建議使用會干擾氫結合的物質,例如尿素和 Gua-HCl。10% 甘油的存在可能會降低產率,而 0.1% SDS 則可完全消除結合。
層析媒介 | 高效能纖維蛋白隔離膠 |
平均粒徑 | 34 µm |
動態結合容量1 | 約.7 mg MBP2*-paramyosin δ-Sal/ml 媒介 (Mr ~70 000, 多聚體在溶液中) Approx.16 mg MBP2*-β galactosidase/ml medium (Mr ~158 000, multimer in solution) |
色譜柱容量 | 1毫升或5毫升 |
色譜柱尺寸 | 0.7 × 2.5 cm (1 ml) 1.6 × 2.5 cm (5 ml) |
建議流速 | 對於 1 ml 和 5 ml 色譜柱,流速分別為 1 和 5 ml/min |
最大流速 | 1毫升和5毫升色譜柱分別為4毫升和20毫升/分鐘 |
最大背壓2 | 0.3 MPa, 3 bar |
化學穩定性3 | 在所有常用的水性緩衝液中均穩定 |
pH 穩定性,工作範圍 短期 | > 7 2 至 13 |
2 °C 至 8 °C 於 20% 乙醇中 |
1 Binding capacity is protein dependent.
2 H2O at room temperature.
3 還原劑(如 5 mM DTT)的存在可能會降低產率。較高的離子強度不會降低產率,因為 MBP 主要透過氫結合與糊精結合。不建議使用會干擾氫結合的物質,例如尿素和 Gua-HCl。10% 甘油的存在可能會降低產率,而 0.1% SDS 則可完全消除結合。
Dextrin Sepharose 產品的清洗
純化後,培養基應按以下方法再生:
- 用 3 柱容量的蒸餾水再生色譜柱,然後再用 3 柱容量的 0.5 M NaOH 和 3 柱容量的蒸餾水再生色譜柱。對於大量糊精 Sepharose HP 媒介,使用 75 至 150 cm/h 的流速。
- 在開始下一次純化之前,用 5 個柱容量的結合緩衝液(20 mM Tris-HCl、200 mM NaCl、1 mM EDTA,pH 7.4)重新校準色譜柱。
上述再生方法的另一種替代方法是用 0.1% SDS 取代 0.5 M NaOH。
如果使用P-1泵,在MBPTrap HP 1 ml色谱柱上最大流速为1-3 ml/min。
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