Ni Sepharose High Performance 由高度交聯的 6% 瓊脂糖珠 (34 µM)組成,珠上固定了螯合基團,之後再充入 Ni2+ 離子。該層析介質對組氨酸標記蛋白具有非常高的結合能力,且 Ni2+ 離子的滲漏可忽略不计。
Ni Sepharose High Performance 可與所有常用的水性緩衝液、還原劑和變性劑(如 6 M Gua-HCl 和 8 M 尿素)以及一系列其他添加劑相容,並允許進行徹底的介質清洗程序(Ni Sepharose、Ni Sepharose excel、TALON Superflow 及不帶電的 IMAC Sepharose 產品的特性)。它在寬廣的 pH 值範圍內都很穩定。
Ni Sepharose High Performance 的主要特性是良好的流动性和高分辨率,是高性能纯化的选择。
Ni Sepharose High Performance 可在 20% 乙醇中预溶解,包装规格为 25 和 100 mL,以及本章稍后描述的方便的预包装形式。

圖 1.Ni Sepharose High Performance 預充 Ni2+,用於組氨酸標記蛋白的高效能純化。
Column packing
請參閱 Column packing and preparation ,以瞭解柱包裝的一般指南。
樣品製備
本樣品製備程序適用於所有包含 Ni Sepharose High Performance(細胞裂解)。
從濃縮儲備液中加入緩衝液、NaCl、咪唑和添加劑;用結合緩衝液稀釋樣本;或進行緩衝液交換,將樣本調整至結合緩衝液的成分和 pH 值。為了防止宿主細胞蛋白與暴露的組氨酸結合,必須在樣品和結合緩衝液中加入低濃度的咪唑(優化組氨酸標記蛋白的純化)。
在使用樣品前,立即將樣品通過 0.22 µM 或 0.45 µM 過濾器和/或離心。使用 His MultiTrap HP 時不需要過濾。如果樣本過於黏稠,可用結合緩衝液稀釋以防止堵塞;增加裂解處理(聲明、均質化);或加入 DNase/RNase 以減少核酸片段的大小。
緩衝液準備
結合緩衝液:20 mM 磷酸鈉、0.最佳咪唑濃度取決於蛋白質;20 至 40 mM 適合許多蛋白質。)
洗脱缓冲液:20 mM 磷酸钠,0.5 M NaCl,500 mM 咪唑,pH 7.4。
用于缓冲液制备的水和化学品应具有高纯度。使用緩衝液前,請先用 0.45 µM 的過濾器過濾。
使用高純度的咪唑,因為這樣在 280 nm 處的吸光度會很低或沒有吸光度。
為了獲得最佳純度和產率,樣品和緩衝液中所需的最佳咪唑濃度因蛋白質而異。在結合緩衝液中,20 到 40 mM 的咪唑適用於許多蛋白質;在洗脫緩衝液中,500 mM 的咪唑可確保完全洗脫目標蛋白質。
作為咪唑洗脫的替代方法,可將 pH 值降低到約 4.5。(
洗脱
- 如果色谱柱含有 20% 的乙醇,用 5 柱体积的蒸馏水清洗。流速為 50 至 100 cm/h。有關流速計算,請參閱 Converting from flow velocity to volumetric flow rates 。
- 在流速為 150 cm/h 的條件下,使用 5 至 10 柱容量的結合緩衝液平衡色譜柱。
- 用結合緩衝液洗滌,直到吸光度達到基線。
- 用洗滌緩衝液進行梯度或線性梯度洗滌。
- 對於線性梯度洗脫,超過 20 柱容量的淺梯度可以分離具有相似結合力的蛋白質。
如果要純化相同的蛋白質,每次純化之間不需要剝離和充電柱。任何純化柱的重複使用都取決於樣品的性質,而且只能使用相同的蛋白質,以防止交叉污染。有關此主題以及清洗和儲存的詳細資訊,請參閱 Ni Sepharose、Ni Sepharose excel、TALON Superflow 和不帶電的 IMAC Sepharose 產品的特性。
手動測量吸光度時,使用洗滌緩衝液作為空白。如果需要去除蛋白中的咪唑,請使用脫鹽柱(Desalting/buffer exchange and concentration)。低品質的咪唑會在 280 nm 處產生明顯的背景吸光度。
Ni Sepharose High Performance 可與還原劑相容。然而,我們建議在使用包含還原劑的緩衝液/樣品前,先去除任何弱結合的 Ni2+ 離子。要做到這一點,可以進行一次不含還原劑的空白試運行(見下文)。
Ni Sepharose High Performance 中 Ni2+ 的泄漏在所有正常条件下都很低。對於非常關鍵的應用,在上樣前進行空白處理(如下所述),可進一步減少純化過程中的滲漏。
空白運行:
- 使用結合緩衝液和洗脫緩衝液 不含還原劑。
- 用5個柱容量的蒸餾水洗滌色谱柱(以除去20%乙醇)。
- 用5個柱容量的洗滌緩衝液洗滌。
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