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首頁蛋白質純化使用 Cytiva 產品(GST 融合蛋白)進行分離

使用 Cytiva 產品(GST 融合蛋白)進行分離

Glutathione S-transferase (GST) 是最常用的標記之一,用於促進重組蛋白的純化和檢測,有一系列產品可用於簡單的一步純化 GST 融合蛋白(請參閱純化選項)。

GST標記蛋白的純化和檢測,以及融合蛋白以包涵體形式表達時如何處理的資訊,在 GST基因融合系統手冊 和 重組蛋白手冊中有深入的論述:蛋白質擴增和簡易純化,可向 Cytiva 購買。

淨化選項

* 請參閱附錄 4,將線性流量 (cm/h) 轉換為體積流量。最大工作流量是在床高 10 cm、內孔距 5 cm 的填料柱中測量計算出來的。

純化範例

圖 22顯示在 GSTrap FF 1 ml 上純化 GST 融合蛋白的典型過程,以及純化蛋白的 SDS-PAGE 分析。

典型的 GST 融合蛋白在 GSTrap FF 1 ml 上的純化過程,以及純化蛋白的 SDS-PAGE 分析。

圖 22.GST 融合蛋白的純化。

Figure 23展示了 GST 融合蛋白的純化如何從 GSTrap FF 1 ml 試劑柱擴大 20 倍至 GSTPrep FF 16/10 試劑柱。

擴大 GST 融合蛋白的純化。

圖 23. 擴大 GST 融合蛋白的純化。

進行分離

結合緩衝液:140 mM NaCl、2.7 mM KCl、10 mM Na2HPO4、1.8 mM KH2PO4,pH 7.3

洗脱缓冲液:50 mM Tris-HCl、10 mM 還原型穀胱甘肽,pH 8.0

用注射器使用 GSTrap FF。

圖 24. 用注射器使用 GSTrap FF。 A:準備緩衝液和樣品。B:平衡色譜柱,載入樣品並開始收集馏分。 C:清洗和洗脫,繼續收集馏分。

  1. 用5-10柱容量的結合緩衝液平衡色譜柱。
  2. 用 5-10 個柱容量的結合緩衝液洗滌。

由於 GST 與穀胱甘肽之間的結合動力學相對緩慢,因此在上樣和洗脫過程中保持低流速非常重要。結合能力取決於蛋白質,因此產率會因蛋白質類型而異。

對於少量產品的單次純化或高通量篩選,GST MicroSpin 膠柱可與離心法或 MicroPlex 24 真空法配合使用,方便簡單。

若要增加容量,請串聯幾支 GSTrap FF 色譜柱(1 ml 或 5 ml)。如需更大容量,請使用 GSTPrep 16/10 FF 色譜柱或將 Glutathione Sepharose 4 Fast Flow 包裝到合適的色譜柱(見附錄 3, Column packing and preparation for affinity chromatography)。GSTrap FF 色谱柱可与注射器、蠕动泵或色谱系统配合使用。

通常包含酶特定识别位点,以便在需要时通过酶裂解去除 GST 标记。凝血酶通常用於酵素裂解,其後必須從重組產品中移除。HiTrap 苄脒 FF(高次)1 ml 或 5 ml 色谱柱为这一过程提供了简单、现成的解决方案(参见第 54 页, Purifcation or removal of serine proteases, e.g. thrombin and trypsin, and zymogens).

GSTrap FF 的重复使用取决于样品的性质。為了防止交叉污染,色譜柱只能用相同的樣品重複使用。

清洗

這些步驟適用於 Glutathione Sepharose 4 Fast Flow 和 Glutathione Sepharose 4B。

  1. 用 2-3 柱容量的高 pH 值(0.1 M Tris-HCl,0.5 M NaCl,pH 8.5)和低 pH 值(0.1 M 醋酸鈉,0.5 M NaCl,pH 4.5)缓冲液。
  2. 重复循环 3 次。
  3. 立即用 3-5 柱体积的结合缓冲液重新平衡。

如果培養基失去結合能力,可能是由於沉澱的蛋白質、變性蛋白質或非特異性結合蛋白質的堆積。

  • 立即用 5 柱容量的結合緩衝液清洗。
  • 去除疏水性結合物質:

    1. 用 3-4 柱容量的 70% 乙醇(或 2 柱容量的非離子洗滌劑 (Triton™ X-100 1%) )清洗。
    2. 立即用 5 柱容量的結合緩衝液清洗。

    媒體特性

    化學穩定性

    在室溫下暴露於 0.1 M 檸檬酸鹽 (pH4.0)、0.1 M NaOH、70% 乙醇或 6 M 鹽酸胍中 2 小時,結合能力無明顯損失。

    儲存

    在中性pH值下,用20%乙醇清洗培養基和色譜柱(使用約5個色譜柱容量來包裝培養基),並儲存於+4至+8 °C.

    材料
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