MAB3430
Anti-Desmin-Antikörper, Klon DE-B-5
clone DE-B-5, Chemicon®, from mouse
About This Item
Empfohlene Produkte
Biologische Quelle
mouse
Qualitätsniveau
Antikörperform
purified antibody
Klon
DE-B-5, monoclonal
Speziesreaktivität
mouse, frog, pig, rat, human
Hersteller/Markenname
Chemicon®
Methode(n)
immunohistochemistry (formalin-fixed, paraffin-embedded sections): suitable
western blot: suitable
Isotyp
IgG1
NCBI-Hinterlegungsnummer
UniProt-Hinterlegungsnummer
Versandbedingung
wet ice
Posttranslationale Modifikation Target
unmodified
Angaben zum Gen
human ... DES(1674)
Spezifität
Immunogen
Anwendung
Zellstruktur
Zytoskelett
Optimale Arbeitsverdünnungen müssen vom Endanwender bestimmt werden.
Immunhisto-/zytochemie-Protokolle
Ideale Proben werden aus Gefrierschnitten von schockgefrorenen Gewebeproben gewonnen. Die gefrorenen Schnitte werden an der Luft getrocknet und dann 10 Minuten lang mit Aceton bei –20 °C fixiert. Überschüssiges Aceton lässt man bei 15–25 °C verdampfen. In Alkohol fixiertes und in Paraffin eingebettetes Material kann ebenfalls verwendet werden (2). Durch die Fixierung mit Formaldehyd wird die Intensität der Färbung je nach den Bedingungen, unter denen sie durchgeführt wird, verringert oder aufgehoben. Andere Fixierungsbedingungen müssen zunächst vom Forschenden getestet werden.
Es ist vorteilhaft, unspezifische Bindungsstellen zu blockieren, indem die Schnitte 20–30 Minuten lang bei 15–25 °C mit fötalem Kälberserum bedeckt werden. Überschüssiges fötales Kälberserum wird vor dem Auftragen der Antikörperlösung durch Dekantieren entfernt.
Zytozentrifugenpräparate von Einzelzellen oder Zellausstrichen werden ebenfalls in Aceton fixiert. Diese Präparate sollten jedoch nicht an der Luft getrocknet werden. Stattdessen wird das überschüssige Aceton durch kurzes Waschen in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) entfernt.
Die weitere Behandlung ist dann wie folgt:
• Das Präparat mit 10–20 μl Antikörperlösung bedecken und in einer feuchten Kammer bei 37 °C 1 Stunde lang inkubieren.
• Den Objektträger kurz in PBS tauchen und dann 3 × 3 Minuten lang in PBS waschen (jeweils in einem frischen PBS-Bad).
• Die Ränder des Präparats trockenwischen und das Präparat mit 10–20 μl einer Anti-Maus-Ig-FITC- oder Anti-Maus-IgG-Peroxidase-Lösung bedecken und 1 Stunde lang bei 37 °C in einer feuchten Kammer inkubieren lassen.
• Den Objektträger wie oben beschrieben waschen.
Das Präparat darf bei keinem der Schritte austrocknen.
Bei Verwendung einer indirekten Immunfluoreszenztechnik sollte das Präparat mit einem geeigneten Einbettungsmedium (z. B. Moviol, Hoechst) bedeckt und unter dem Fluoreszenzmikroskop untersucht werden. Wurde ein POD-Konjugat als Sekundärantikörper verwendet, sollte das Präparat mit einer Substratlösung (siehe unten) bedeckt und bei 15–25 °C inkubiert werden, bis sich eine deutlich sichtbare rotbraune Farbe entwickelt. Eine Negativkontrolle (z. B. nur der Sekundärantikörper) sollte während dieser Inkubationszeit in ihrer Farbe unverändert bleiben. Anschließend wird das Substrat mit PBS abgewaschen und das Präparat, falls gewünscht, etwa 1 Minute lang mit Hämalaun angefärbt. Die Hämalaunlösung wird mit PBS abgewaschen; das Präparat wird eingebettet und untersucht.
Substratlösungen:
Aminoethyl-Carbazol: 2 mg 3-Amino-9-ethylcarbazol werden in 1,2 ml Dimethylsulfoxid gelöst und mit 28,8 ml 50 mM Tris-HCI, pH-Wert 7,3 sowie 20 μl 3%igem H₂O₂ (w/v) versetzt. Lösung täglich frisch herstellen. Diaminobenzidin: 25 mg 3,3′-Diaminobenzidin werden in 50 ml 50 mM Tris-HCI, pH-Wert 7,3, gelöst und mit 40 μl 3%igem H₂O₂ (w/v) versetzt. Lösung täglich frisch herstellen.
Qualität
Verlinkung
Physikalische Form
Lagerung und Haltbarkeit
Sonstige Hinweise
Rechtliche Hinweise
Haftungsausschluss
Empfehlung
Lagerklassenschlüssel
12 - Non Combustible Liquids
WGK
WGK 2
Flammpunkt (°F)
Not applicable
Flammpunkt (°C)
Not applicable
Analysenzertifikate (COA)
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