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mRNA 疫苗和治療劑的製造策略

COVID-19疫苗的快速開發和成功證明了mRNA的力量 - 但其潛力遠遠超出了這一應用:mRNA技術 有望解決尚未滿足的醫療需求,並為對抗癌症、心臟病或傳染病提供新的治療選擇。

將 mRNA 傳輸到病患細胞的細胞體內,可以誘導目標蛋白質的產生,而目標蛋白質可以發揮治療或預防的功能,也可以作為抗原來引發免疫反應以達到接種疫苗的目的,還可以取代有缺陷的蛋白質或啟動抗腫瘤反應。

與廣泛用於疫苗和基因治療的腺相關病毒 (AAV) 向量等病毒傳輸系統相比,mRNA 技術等非病毒傳輸系統具有多種優點:更好的安全性、高度的通用性,以及使用模板化製程簡化製造過程。開發科學家致力於透過優化製程與傳遞平台來提升 mRNA 的穩定性、轉譯性與安全性。

檢視我們所有的mRNA 開發與製造的產品與服務

部分概述

mRNA 疫苗和治療劑的開發和製造相對簡單、可擴展且極為快速(圖 1)。由於 mRNA 技術可以縮短從研發到臨床再到核准的時間,因此不僅可以快速有效地應對傳染病的爆發,也可以用來開發新的治療方法,以解決尚未滿足需求的疾病。與傳統的體內蛋白質表達不同,不需要耗時的克隆和擴增步驟,也不需要移除細胞和宿主細胞蛋白。這種簡化的製造過程顯示出非凡的速度和靈活性,因為它對任何目標都使用相同的反應材料和容器,這使得 GMP 設備可以在非常短的時間內轉換到新的蛋白質目標,而只需對工藝和配方進行最小限度的調整。

mRNA 製造的一般製程概述

圖 1.mRNA 製造的一般製程概述。

要優化製程、產量、品質和最終產品的安全性,有幾個關鍵的考慮因素。例如,這包括選擇適當的製程化學品和原料。特別是在體外轉錄和下游純化過程中,mRNA 是不受保護的,有很高的酵素降解風險。使用通過內切酶活性測試的產品,可將 mRNA 從製造到純化再到制劑的整個過程中 RNase 誘發降解的風險降至最低。為了控制微生物和內毒素污染的風險,使用特定低微生物和內毒素含量的產品也很重要。這是對注射劑等高風險應用尤其重要,因為污染微生物造成傷害的可能性增加。

本網頁專門針對 mRNA,提供技術與產品選擇的深入資訊,協助您有信心地掌握從製造到最終灌裝的 mRNA 製程。為了支援您做出明智的決定,我們在小冊子 "Enabling Capabilities and Solutions for all mRNA platforms" and "Process chemicals for mRNA drug manufacturing".

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mRNA:STRUCTURAL ELEMENTS AND THEIR FUNCTION

mRNA結構的設計是為了確保相關基因的有效表達。穩定性、基因表達和有效的蛋白質翻譯取決於幾個結構元素(圖 2):

mRNA 結構

圖 2.mRNA 結構。

  • 位於序列 5' 端的帽區:對於 mRNA 成熟、被核糖體識別以進行有效的蛋白質翻譯,以及保護其免受核酸酶消化以提高穩定性,都是必不可少的。
  • 位於 mRNA 編碼區上游和下游的非翻譯區 (UTR):調控 mRNA 的翻譯、定位和穩定性;可利用其提高蛋白質的表達效率。
  • 開放閱讀框或編碼序列區域:包含感興趣的基因 (GOI)。
  • Poly(A)尾:防止 3' 外切酶的消化,對蛋白質的翻譯和 mRNA 的穩定性至關重要。

Making mRNA

生產以 mRNA 為基礎的治療劑和疫苗 如圖 1 所示,首先以質粒 DNA (pDNA) 為模板,然後將其線性化並轉錄為 RNA:

  • pDNA製作:pDNA模板包含DNA依賴的RNA聚合酶啟動子和mRNA結構的相應序列。鑑於 pDNA 建構體的核心作用,其設計和純度是優化 mRNA 產品的重要因素。所需的 pDNA 會在細菌細胞(通常是 大腸桿菌)中擴大,隨後的純化步驟會產生純淨、濃縮的環狀 pDNA。克服核酸大尺寸及其高粘度、剪切敏感性以及 pDNA 與雜質之間相似性等相關挑戰的策略,將在我們的出版物 "Designing a Plasmid DNA Downstream Purification Process"。
  • pDNA線性化:迴圈 pDNA 在反應緩衝液1中使用限制性酵素進行線化作為 RNA 聚合酶轉錄所需 mRNA 的模板。
  • pDNA純化:去除雜質,例如限制性酵素、牛血清白蛋白 (BSA)、DNA 片段、內毒素等。大多數實驗室規模的製程都是利用溶劑萃取技術,但不適用於 GMP 生產環境。作為替代方案,切向流過濾 (TFF) 和層析是此純化步驟中有效的雜質去除技術。內毒素已被確認為 pDNA 製造過程中的重要雜質,對後續製程步驟有很大影響,最終也會影響病患的安全。洗滌劑可用於去除內毒素,例如使用 Deviron® C16 洗滌劑 作為一種合適的可持續、可生物降解且符合 REACH 標準的傳統洗滌劑替代品。2

瞭解更多關於pDNA 的生產和純化 ,請參閱我們的專題技術文章。

  • 體外轉錄 (IVT):線性化的 pDNA 作為 DNA 範本,在酵素反應中利用自然轉錄過程的元素轉錄成 mRNA。體外轉錄中的關鍵元件包括將 DNA 序列轉錄為 RNA 序列的 RNA 聚合酶、作為 mRNA 組成塊的核苷三磷酸鹽 (NTP)、提高 mRNA 產量的無機焦磷酸酶 (IPP) 以及防止 RNA 降解的 RNase 抑制劑。在轉錄緩衝液中,典型的化學物質如二硫蘇糖醇(無機焦磷酸酶(IPP)。a href="/product/mm/137165">spermidine(提高轉錄效率和核酸穩定性的成分)。
    • 拉曼作為一種強大的分析工具,有可能用於監測酵素反應,例如 IVT 步驟。迄今為止,為了監控 IVT 步驟,必須執行繁瑣的離線分析,因此無法在反應條件和/或生產力目標未達時立即採取行動。拉曼光譜技術可以解決這個問題,它可以更快速地測量 CPPs & CQAs,讓操作人員可以更快速地做出決策,以確保最佳的製程條件。
  • 加帽:在轉錄之後,最終的 mRNA 結構需要一個 5' 的加帽結構,以確保穩定性和在細胞中的有效轉導。
    • 共轉錄加蓋,通常在轉錄混合物中使用加蓋類似物和三磷酸鸟苷 (GTP),添加比例為四個加蓋類似物對一個 GTP。與酵素封頂相比,共轉錄封頂的成本較低且速度較快,因為它是在 IVT 步驟中,在相同的反應器混合液中進行。然而,效率和產量較低,而且可能會因為錯誤結合或反向納入而產生非封頂雜質。反向封頂類似物 (Antireverse cap analogs, ARCA) 已經被開發出來,可以防止 5' cap 的反向納入,從而提高翻譯效率。
    • 酵素封頂(或稱轉譯後封頂)是在從體外轉錄混合物中純化 mRNA 之後進行的。此反應通常使用疫苗病毒封頂酵素將封頂結構加入 mRNA 結構中。雖然酵素鎖蓋的鎖蓋效率非常高,但成本較高,而且需要額外的單元操作。

這些製程步驟之後會進行 mRNA 的純化和配制,以獲得最終的藥物產品。

PURIFYING mRNA

經過 體外 ;轉錄步驟後,mRNA 會從之前步驟中使用的雜質和材料中純化出來,包括內毒素、免疫原性雙股 RNA (dsRNA)、殘留的 DNA 模板、RNA 聚合酶和元素雜質。在此階段,mRNA 需要在適當的緩衝液中進行 TFF、酵素封頂和/或層析步驟。有幾種選項可用於 mRNA 純化和去除殘留 DNA:

  • 切向流過濾 (TFF) 用於有效地將 mRNA 與膜無法截留的較小雜質分離。一般而言,DNA 範本會透過加入 DNases 而降解;然後所產生的小 DNA 片段便可利用 TFF 輕易從較大的 mRNA 分子中分離出來。根據 mRNA 的大小,可使用 30 至 300 kDa 的分子量截距。使用 TFF 可以在相同的單元操作中完成產品的純化、濃縮和重濾。但是,小的 DNA 片段可能會與 mRNA 杂交,產生額外的雜質,如果使用捕獲技術去除 DNA 模板,就可以避免這種情況。
  • 層析技術,例如反相離子對 (IPPP)、 ;陰離子交換 (AEX) 和使用 poly(dT) 捕獲的親和層析 (AC) (圖 3) 提供了去除 DNA 模板的有效方法,省去了 DNA 模板消化的需要和在超/過濾步驟中可能發生的雜交風險。1 為了去除不需要的產物和寡核苷酸雜質,在酵素封頂步驟後也會使用層析技術。然而,這種方法較為昂貴,而且介質交換和後續步驟的準備仍然需要 TFF 步驟。
比較反相離子對、陰離子交換和親和色譜法用於 mRNA 純化(DBC:動態結合能力)。

圖 3:比較反相離子對、陰離子交換和親和色譜法用於 mRNA 純化(DBC:動態結合能力)。

  • Reversed-phase ion pairing (IPRP) is commonly used at small scale and allows a very efficient and rapid RNA purification and good separation of single stranded RNA (ssRNA) from DNA, double stranded RNA (dsRNA), and short transcripts.此方法的缺點包括:溶劑的使用會影響 GMP 製造的適用性;mRNA 會被離子對試劑複合,需要重過濾步驟來去除複合物;對蛋白質和聚合體的汙染很敏感,使得此技術更適合研磨而非擷取。
  • Anion exchange chromatography (AEX) 具有 > 10 mg RNA/mL 的高動態結合能力,可非常有效地去除免疫原性雜質,如 dsRNA、未封裝 RNA、RNA-DNA 混合體和其他 RNA 結構,如髮夾 mRNA。雖然 AEX 允許使用水溶液,但可能需要添加具有潛在毒性的混沌劑,並在高達 85 °C 的溫度下進行操作,以解吸附在樹脂上的大型 mRNA 分子。5
  • Affinity chromatography (AC) poly(dT) capture 使用樹脂專門擷取全長 mRNA transcripts 的 poly(A) 尾端。此製程可有效去除 DNA、核苷酸、酵素、緩衝液成分和任何其他沒有 poly(A) 尾部的雜質。與 AEX 相同,它允許使用水溶液,在 AC 的情況下通常是鹽梯度。與 IPRP 和 AEX 不同的是,AC 無法區分 dsRNA 和 ssRNA,也無法有效去除其他與產品相關的雜質,例如與 mRNA 杂交的 DNA 片段。
  • 層析步驟之後會進行最終濃縮和重過濾,以最大限度地提高產品純度,並將 mRNA 轉移到適當的緩衝液中進行配制或儲存。在此階段,mRNA 可在相同的單元操作中進一步純化、濃縮及重濾。TFF 步驟之後可以進行無菌過濾步驟;然而,分子量為 5000 kDa 或更高的 mRNA 的無菌級過濾可能具有挑戰性。

MFORMULATING THE mRNA

經過最後的 mRNA 純化步驟後,接下來要考慮的是遞送機制 (圖 4)。遞送工具對於確保 mRNA 疫苗和治療藥物的有效性至關重要。最先進的傳輸方法之一是以脂質和聚合物的組合為基礎,包括寡核苷酸與脂質結合形成脂聚體的複合物,或帶正電荷的聚合物(如聚乙烯亞胺 (PEI))形成多聚體。脂質奈米粒子 (LNP) 是最常用的 mRNA 傳輸平台。

有幾種 mRNA 傳輸系統可供使用

圖 4.有幾種 mRNA 傳輸系統可供使用。

脂質選擇的注意事項

選擇脂質時,必須考慮傳輸途徑,以確保最大的效果和最佳的生物分布。除了脂質的選擇之外,個別脂質之間的比例也是微調的關鍵,會直接影響雙層的流動性和 LNP 的融合性。在選擇脂質時,有多個關鍵因素在起作用,包括類型、來源和品質,這些因素會直接影響最終配方中的雜質概況和特性,如顆粒特性、穩定性和釋放概況。一致的脂質品質是重現結果的必要條件,這在很大程度上取決於合成脂質的原料品質和脂質的材料特性。 合成脂類  具有穩定、高品質的產品,以及由可信賴的合作夥伴提供量身訂做的支援與服務 是滿足個別需求的理想選擇,並可確保最終產品的最佳效能。

每個 LNP 由四種不同的脂質組成,可將 mRNA 攜帶其中並保護其免於降解:

  • 陽離子/可離子脂質 需要透過靜電相互作用來包覆 RNA。傳遞至肝細胞(用於增強或抑制蛋白質表達)需要可離子化的脂質(被動靶向、內體釋放),而免疫細胞的吸收則容易得多。強陽離子脂質也可達到此目的,負責將 RNA 有效釋放到細胞質中。陽離子脂質的結構會顯著影響 LNP 的活性、毒性和生物分布。
  • 聚乙二醇 (PEG) 脂質 可提供膠體穩定性,防止蛋白質與微粒結合,從而使微粒免受免疫系統的影響,並實現更長時間的循環。PEG 鏈和脂肪酸鏈的長度決定了循環壽命和融合性,或微粒與 LNP 內體膜的融合程度。若要延長循環時間,可使用較長的脂肪酸鏈,例如聚乙二醇甘油酯 (DSG PEG 2000)。PEG 濃度也會影響顆粒大小。
  • 中性/負離子脂質 提供結構穩定性,並在確定融合性和生物分布方面發揮作用。1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine. 例如,研究表明,與1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DSPC)相比,含有1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DOPE)(在內體釋放中發揮重要作用)的LNPs可使mRNA向肝臟的遞送得到增強。5研究結果顯示,這些輔助脂質也有助於 RNA 的穩定包封。6
  • Cholesterol is used to modulate the bilayer density, fluidity and uptake (raft formation) of the LNP.雖然市面上有動物衍生的膽固醇和合成膽固醇,但合成膽固醇有幾個優點,包括純度更高、不含動物衍生的分子(如朊病毒)、可擴展性和高度穩定的品質。

純化的 mRNA 可以透過不同的技術配制成遞送粒子。在常用的溶劑注射技術中,將脂質溶解在乙醇等溶劑中,然後在含有 mRNA 的水性低 pH 緩衝液中快速混合,使用交叉流混合或微流控混合技術製成 LNPs。然後將低 pH 緩衝液重過濾成中性緩衝液,再使用超濾來濃縮微粒。TFF 步驟必須快速,因為脂質在低 pH 值下會水解,導致形成雜質,如水脂質,影響脂質雙層結構、製劑穩定性和藥物釋放特性。脂質的降解也會增加微粒的尺寸,導致聚集。

LNPs 與其他傳輸系統相比,具有非常好的穩定性、結構可塑性和增強的基因傳輸能力。與裸 mRNA 相比,它們能提高轉染率,允許靜脈注射而不會有被血液中存在的 RNase 降解的風險,如果加入特定配體,還能實現主動靶向。LNPs 的缺點包括可能需要冷鏈物流。此外,LNPs 並非總是能進行無菌過濾,在這種情況下必須考慮其他替代方法,例如伽馬輻照、熱消毒、高壓消毒或封閉處理。

有關 mRNA 制劑的更多資訊,請閱讀我們的白皮書 "Considerations for Advancing a Lipid Nanoparticle Formulation to Clinical and Commercial Manufacturing".

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擴大 mRNA 製造過程時有幾個注意事項,在小規模製造過程開發時應該將它們放在首位。

  • 使用溶劑萃取和沉澱步驟進行 mRNA 純化的方法難以擴大規模 而且使用有害溶劑不適合 GMP 環境,可以用 TFF 或層析技術取代。
  • 由於 mRNA 可在幾秒鐘內被 RNases  降解,因此與產品接觸的每一種原料、溶液和設備都必須不含這些酵素。
  • 適當的傳輸系統有助於疫苗或療法的效率,因此應謹慎選擇。
  • 如果最終產品是大型 mRNA 複合物,則應評估無菌過濾產品的替代方案。
  • 對供應鏈的特殊要求(如冷鏈)是一個重要的成本動因。因此,應仔細評估藥物的穩定性。

mRNA:A BRIGHT FUTURE

mRNA技術使COVID-19候選疫苗的開發以前所未有的速度和出色的有效率進行。

然而,為了確保這種治療方法能充分發揮其潛力,我們需要凝聚創新的解決方案、專業知識和智慧,以建立一個簡單、穩健的生產規模平台。透過我們的產品、服務和專業支援,我們致力於簡化您的決策流程,協助您成功開發 mRNA 藥物產品,並共同推進以 mRNA 為基礎的疫苗和治療藥物的製造。




參考資料

1.
Bancel S, Issa J, Aunins J. Ribonucleic acid purification (Patent No. WO2014152031A1).. [Internet]. Available from: https://patents.google.com/patent/WO2014152031A1/en
2.
Kiesewetter A, Gupta A, Heinen‐Kreuzig A, Greenhalgh T, Stein A. 2023. Improved endotoxin removal using ecofriendly detergents for intensified plasmid capture. Biotechnology Progress. 39(6): https://doi.org/10.1002/btpr.3375
3.
Bancel S, Issa J, Aunins J, Chakraborty T. 2014. Manufacturing methods for production of rna transcripts (Patent No. WO2014152027A1).. [Internet]. Available from: https://patents.google.com/patent/WO2014152027A1/en
4.
Issa J, Barberio J, Aunins J, Aefyan N. Ion exchange purification of mRNA (Patent No. WO2014144767A1).. [Internet]. Available from: https://patents.google.com/patent/WO2014144767A1/en
5.
Miao L, Li L, Huang Y, Delcassian D, Chahal J, Han J, Shi Y, Sadtler K, Gao W, Lin J, et al. 2019. Delivery of mRNA vaccines with heterocyclic lipids increases anti-tumor efficacy by STING-mediated immune cell activation. Nat Biotechnol. 37(10):1174-1185. https://doi.org/10.1038/s41587-019-0247-3
6.
Kulkarni JA, Witzigmann D, Leung J, Tam YYC, Cullis PR. On the role of helper lipids in lipid nanoparticle formulations of siRNA. Nanoscale. 11(45):21733-21739. https://doi.org/10.1039/c9nr09347h
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