Duolink® PLA 多色檢測通訊協定
本方案描述了使用 Duolink® PLA Multicolor 試劑在單一組織或細胞樣本中同時檢測、顯示和定量多達四種蛋白質、蛋白質修飾和/或蛋白質相互作用。
材料與設備
Duolink® PLA試劑
Duolink® PLA試劑要執行 Duolink® PLA Multicolor 實驗,需要下列 Duolink® PLA Multicolor 產品:
- 兩到四個 Duolink® PLA多色探針製作套件 (從 紅色、綠色、橙色和/或FarRed中選擇)。每個套件包括:
- Duolink® PLA多色寡核苷酸 兩小瓶凍乾、活化的寡核苷酸,用於與一抗結合:
紅色寡核苷酸A 和 紅色寡核苷酸B,
綠色寡聚體C 和 綠色寡聚體D,
橙色寡聚體F 和 橙色寡聚體G,
遠紅寡核苷酸 H 和 遠紅寡核苷酸 I - Conjugation Buffer – For buffering the conjugation reaction
- Stop Reagent –用於停止結合反應
- 儲存液 - 用於保存寡聚結合抗體(PLA 探針)
注意: 將所有試劑組 元件儲存於 -20 °C。請參閱 Duolink® PLA Probemaker Guide for Multicolor Detection,以瞭解如何將特定的寡聚物組合至一抗。抗體結合後,將製備好的 PLA 探針儲存於 +2-8 °C。
- Duolink® PLA多色寡核苷酸 兩小瓶凍乾、活化的寡核苷酸,用於與一抗結合:
- Duolink® PLA多色試劑包。每個套件包括
- 連接濃縮液 (5X) - 稀釋製成 1X 結合緩衝液
- 連接酶 (1 U/μL) - 添加製成結合溶液 Amplification Stock (5X) - 稀釋製成 1X Amplification Buffer
- 聚合酶 (10 U/μL);- 加入製成 Amplification Solution。
- 阻斷液(Blocking Solution) - 用於抗體孵育前阻斷樣品
- Probemaker聚乳酸探針稀釋液(Probemaker PLA Probe Diluent) ;- 用於稀釋定制的 PLA 探針
- 檢測試劑(5X) - 稀釋成 1X 檢測緩衝液
NOTE: 1X阻斷液和1X Probemaker PLA探針稀釋液收到後可儲存於+2-8 °C。所有其他成分儲存於 -20 °C。
- 螢光清洗緩衝液
- Duolink® ;含 DAPI 的裝片培養基 (用於玻片,儲存於 +2-8 °C)或 核染色及防褪色 (用於微孔板,儲存於 -20 °C)
附加材料
- 檢測感興趣蛋白質的一抗
- 高純度水(無菌過濾,Milli-Q® 水或類似)
- 載片上的樣本(細胞或組織),預先進行固定、回收和透化處理
設備
Duolink?® PLA 多色檢測規範
以下規範是針對玻片上 1 cm2 的樣品,需要 40 µL 的溶液才能充分覆蓋。
請根據您的反應面積和樣品數量調整用量。所有孵育都應在恆濕箱中進行。
試劑製備
洗滌緩衝液 A 和 B 應在檢測開始之前製備,方法是將一小袋的內容物溶解在高純水中,最終容量為 1,000 mL。溶液可在室溫下短期儲存(少於兩週),或在 +2-8 °C下長期儲存。
注意: 使用前將溶液調至室溫。
- 0。01X 洗滌緩衝液 B 應在檢測開始前用高純水 1:100 稀釋 1X 洗滌緩衝液 B 製備。
- 許多 Duolink® PLA 試劑以濃縮庫存提供,使用前應立即稀釋。請勿儲存稀釋後的 Duolink® PLA 試劑。
多色 Duolink® PLA 規範
開始前,樣品應放置在玻璃載玻片上,並預先進行固定、回收和/或透化處理。
- 阻斷
注意: 使用前請擰緊 1X 阻斷液的蓋子,因為滴管可能在冷凍和解凍過程中移位。儲存於 +2-8 °C。- 每 1 cm2 樣品加入 1 滴 (~40 µL) Duolink® Blocking Solution。
- 每 1 cm2 樣品加入 1 滴 (~40 µL) Duolink® Blocking Solution。
- 初級抗體孵育
注意: 加入抗體前不要讓玻片乾燥,因為這會造成背景- 在Probemaker PLA Probe Diluent中稀釋所有寡聚結合的一抗。
- 從玻片上取下阻斷液。
- 在每個樣品中加入一抗溶液。
- 在濕度室中孵育玻片。使用適合所有一抗的最佳孵育溫度和時間。
- 連接
注意: 等到加入樣品前立即加入連接酵素。- 拍掉玻片上的一抗溶液。
- 室溫下用 1x Wash Buffer A 洗玻片 3x 5 分鐘。渦旋5x多色PLA結合緩衝液。
- 將5x多色PLA結合緩衝液1:5稀釋於高純水中並混合。 對於 40 µL 的反應,在 30 µL 的高純水中加入 8 µL 的 5x 結合緩衝液(減去結合酶的容量)。為所有樣品製作足夠的溶液。
- 使用冷凍塊(-20 °C)從冷凍庫中取出連接酵素。
- 在 1x 結合緩衝液中以 1:20 稀釋連接酵素並混合。 對於 40 µL 結合溶液,在 38 µL 的 1x 結合緩衝液中加入 2 µL 的 Ligase。
- 拍掉多餘的洗滌緩衝液並塗上結合溶液。
- 在 37 °C下將玻片放在預先加熱的濕度室中培養 30 分鐘。
- 擴增
注意: 等到加入聚合酶後,才立即加入樣品。- 拭去玻片上的結合液。
- 在室溫下,用 1x 洗滌緩衝液 A 洗滌玻片 3x 5 分鐘。
- 在洗滌過程中,製作擴大液。
- 在高純水中以 1:5 稀釋 5x Amplification buffer 並混合。對於 40 µL 反應,在 31 µL 高純水中加入 8 µL 5x Amplification buffer(減去聚合酶的體積)。
- 使用冷凍塊(-20 °C)將聚合酶從冷凍室取出。
- 在 1x 擴增緩衝液中以 1:40 稀釋聚合酶並混合。
- 拍掉多餘的洗滌緩衝液,並塗上擴增溶液。
- 在 37 °C 下,將玻片放在預先加熱的濕度室中培養 100 分鐘。
- 檢測
注意: 多色 PLA 檢測緩衝液對光線敏感。- 拍掉玻片上的擴增溶液。
- 在室溫下,用 1x Wash Buffer A 洗滌玻片 3x 5 分鐘。
- 將 5X 多色 PLA 檢測緩衝液以 1:5 的比例稀釋於高純度水中並混合。40 µL 反應,將 8 µL 5x 檢測緩衝液加入 32 µL 高純度水中。
- 滴去多餘的洗滌緩衝液,並塗上檢測溶液。
- 在 37 °C、預先加熱的濕度室中孵育玻片 30 分鐘。
- 最終清洗
注意: 光敏試劑。保持玻片避光- 拍掉玻片上的檢測液
- 室溫下用 1x Wash Buffer B 洗玻片 2x 10 分鐘
- 用 0.01X 洗滌緩衝液 B 1 分鐘
- 成像準備
注意: 含 DAPI 的 Duolink® In Situ Mounting Media 是水性的,不會凝固。可用透明指甲油將封面貼的邊緣與玻片密封。- 從玻片上拭去多餘的洗滌緩衝液。
- 使用最小量的 Duolink® PLA Mounting Medium with DAPI,用蓋玻片鑲貼玻片。
- 等待 15 分鐘,然後在螢光顯微鏡或共焦顯微鏡中分析,至少使用 20 倍的物鏡。
結果
影像擷取
從 Duolink® PLA多色實驗的結果是使用熒光顯微鏡觀察的,並配備適用於所使用的檢測螢光團的濾光片。Duolink® PLA信號在不同的細胞位置被識別為離散的螢光點(圖1A)。單個信號的大小為亞微米級,可能位於多個焦平面。因此,可能需要獲得整個樣品厚度的影像。值得注意的是,在Duolink® PLA中使用直接檢測法(即省略寡聚結合一抗)時,不應檢測到PLA信號。如有可能,應加入生物對照(圖 1B)。

圖 1. SK-OV3 細胞受 EGF 刺激 (A) 或未受刺激作為生物對照 (B)。Duolink® PLA 多色檢測 EGFR-HER2 相互作用(綠色)、EGFR 磷酸化(橙色)和 HER2 磷酸化(遠紅色)。細胞核經 DAPI 染色(藍色)。
基於信號強度,每種螢光顏色的擷取設定(曝光時間、增益等)可能不同。然而,重要的是,在實驗中使用相同的、優化的設定來擷取所有樣品的影像。可使用陽性和陰性對照對設定進行最佳化。如果 PLA 信號數量較多,PLA 信號可能會合併/凝聚 (圖 2)。這種情況可能發生在研究高表達蛋白質時,或在圖像捕捉過程中由於曝光過度而造成。因此,必須小心設定擷取設定和適當的一抗滴度,以獲得個別的 PLA 訊號。

圖 2.Duolink® PLA 多色檢測未刺激的 SK-OV3 細胞中的 EGFR(綠色)、HER2(橙色)和 GAPDH(紅色)。細胞核經 DAPI 染色(藍色)。
有幾種圖像分析工具可用來量化 PLA 信號。圖像資料可分析 PLA 信號的平均螢光強度和/或每個細胞或細胞內每個區域的 PLA 信號總數(圖 3)。然後在特定實驗中報告相對於技術和/或生物對照的定量。然而,只有在 PLA 信號未凝聚且圖像像素未飽和的情況下,才能進行可靠的定量。

圖 3.使用影像軟體進行影像分析。DAPI 染色的細胞核(藍色)會被自動偵測出來,而胞質大小則由使用者估算(綠色輪廓)。PLA 訊號(紅色)代表感興趣的蛋白質目標。在分析過程中,以白點標示的 PLA 訊號和以黃色勾勒的細胞核會被量化。
參考資料
多重 PLA 紙張:
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