注意事項和免責聲明
本產品僅供 R&D 使用,不得用於藥物、家庭或其他用途。請參閱安全資料表,以瞭解有關危害和安全處理實務的資訊。
試劑
- 25 mL 丙氨酸分析緩衝液
- 0.2 mL 丙氨酸探針,DMSO中
- 1 vl 丙氨酸轉換酶
- 1 vl 丙氨酸顯影混合液
- 0.1 vl 丙氨酸標準品,10 µmole
需要但不提供的試劑和設備
- 96孔平底板 - 建議使用黑色透明底板(M5686 或同等產品)進行螢光檢測,透明板(M4436 或同等產品)進行比色檢測。
- 螢光或分光光度法多孔平板閱讀器
- 10 kDa 分子重量截斷(MWCO)旋轉過濾器(Z706345 or equivalent)
製備說明
開瓶前將小瓶簡單離心。使用超純水製備試劑。
丙氨酸分析緩衝液 - 使用前讓緩衝液達到室溫。
丙氨酸探針 - 使用前加熱至室溫,使冷凍溶液融化。在 -20 °C 下避光防潮保存。
對於螢光檢測,在使用前用丙氨酸檢測緩衝液稀釋比色丙氨酸探針溶液的等分量 5 到 10 倍。
丙氨酸轉換酶 - 用 220 µL 丙氨酸分析緩衝液重構。用移液管攪拌均勻,然後等分並儲存於 -20 °C。使用時保持低溫並避光。
丙氨酸顯影混合物 - 用 220 µL 丙氨酸分析緩衝液重構。用移液器攪拌均勻,然後等分並儲存於 -20 °C。
丙氨酸標準液 - 用 100 µL 水重製成 100 mM (100 nmole/µL) 丙氨酸標準液。用移液管攪拌均勻,然後等分並儲存於 -20 °C。
儲存/穩定性
試劑盒以濕冰運送。
操作步骤
所有样品和标准品应一式两份。
比色法檢測丙氨酸標準液
用990 µL水稀釋10 µL 100 mM (100 nmole/µL)丙氨酸標準液,製備1 mM (1 nmole/µL)標準液。在 96 孔板中加入 0、2、4、6、8、10 µL 的 1 mM 丙氨酸標準溶液,產生 0(空白)、2、4、6、8 和 10 nmole/ 孔標準。每孔加入丙氨酸分析緩衝液,使容量達到 50 µL。
丙氨酸標準液的螢光檢測
製備 1 mM 標準液,與比色法相同。取 100 µL 1 mM 丙氨酸標準溶液,加入 900 µL 水,製成 0.1 mM 丙氨酸標準溶液。在 96 孔板中加入 0、2、4、6、8、10 µL 的 0.1 mM 丙氨酸標準溶液,生成 0(空白)、0.2、0.4、0.6、0.8 和 1.0 nmole/ 孔標準。
樣品準備
比色法和螢光法檢測每個反應(孔)都需要 50 µL 樣品。
血清樣品在檢測前應使用 10 kDa MWCO 旋轉過濾器去蛋白。
組織或細胞(1 x 106)可在 100 µL 丙氨酸分析緩衝液中均質化。以 13,000 x g 離心 10 分鐘以去除不溶物。
注意:血清以外的樣品也可以在加入反應前用 10 kDa MWCO 旋轉過濾器去蛋白質。
對於未知樣品,建議測試幾個樣品稀釋本,以確保讀數在標準曲線的線性範圍內。
在反應混合物中省略丙氨酸轉換酶,為每個樣品加入空白樣品。
分析反應
- 根據下表中的方案設置反應混合物。每個反應(孔)需要 50 µL 適當的反應混合物。
- 在空白孔、標準孔和測試孔中各加入 50 µL 適當的反應混合物。使用水平搖床或移液器充分混勻,然後在 37 °C 下孵育 60 分鐘。孵育期間應避免光線照射。
- 比色法檢測時,在 570 nm (A570) 處測量吸光度。對於螢光檢測,測量螢光強度(λex = 535/λem = 587 nm)
結果
計算
檢測的背景是 0(空白)丙氨酸標準品所獲得的值。通過從所有讀數中減去空白值來校正背景。背景值可能很顯著,必須從所有讀數中減去。使用從適當丙氨酸標準品中獲得的值繪製標準曲線。
注意:每次進行檢測時都必須建立新的標準曲線。
從樣品讀數中減去空白樣品值,獲得校正測量值。使用校正後的測量值,可根據標準曲線判定樣品中丙氨酸的含量。
丙氨酸濃度
Sa/Sv ;= C
Sa = 根據標準曲線測得的未知樣品中丙氨酸的量 (nmole)
Sv = 加入孔中的樣品體積 (µL)
C = 樣品中丙氨酸的濃度
L-Alanine molecular weight:89.09 g/mole.
樣品計算
丙氨酸的數量 (Sa) = 5.84 nmole
樣品容量 (Sv) = 50 µL
樣品中丙氨酸的濃度
5.84 nmole/50 µL = 0.1168 nmole/µL
0.1168 nmole/µL x 89.09 ng/nmole=10.4ng/µL
。圖 1.ColorImetric 標準曲線。
圖 2.螢光標準曲線。
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