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product name
BSK-H 培养基, With sodium bicarbonate, suitable for Borrelia burgdorferi (Qualified)
無菌
sterile; sterile-filtered
形狀
liquid
適合性
suitable for Borrelia burgdorferi (Qualified)
應用
food and beverages
成分
NaHCO3: 2.2 g/L
glucose: 6.0 g/L (Dextro)
phenol red: 0.02124 g/L
HEPES: 6.0 g/L
運輸包裝
dry ice
儲存溫度
−20°C
應用
BSK-H 培养基是一种标准化的复合培养基，设计用于支持莱姆病螺旋体伯氏疏螺旋体的生长。为了标准化莱姆病螺旋体的分离和培养流程，Pollack，RJ 等人改良了通常用于此目的的培养基（BSK-II）的组成，并开发了一个用于其分配的系统。该培养基不含明胶或琼脂糖，各种成分的使用比例与 BSK-II 不同。通过对完整产品的样品进行替换来筛选每种主要的蛋白质成分。评估了最终培养基培养相关螺旋体的能力，包括伯氏疏螺旋体 N40、Guilford 和 JD-1 以及赫氏疏螺旋体（HS-1） 和质革疏螺旋体（CO53） 的菌株。标准化培养基，补充了预先筛选的兔血清，有助于实验室之间比较研究结果，并可以根据病原体的证明对莱姆病进行明确的临床诊断。标准化培养基命名为 BSK-H。
用于莱姆病螺旋体伯氏疏螺旋体的生长和扩增的配方
準備報告
1.BSK-H培养基以无菌过滤液体的形式提供。解冻后，使用前倒置瓶子充分混合。如果解冻的培养基在几天内都不会使用，建议将培养基以工作等分试样的形式重新冷冻，以避免重复的冻融循环。
2.使用前，我们建议在无菌条件下为培养基补充预先筛选、无菌过滤的血清，最终浓度为 6%。（参见以下注释）
3.可能添加0.1% NaN作为防腐剂。可以根据需要在无菌条件下添加其他补充剂。
注：为获得理想性能，用于补充培养基的血清应针对其支持伯氏疏螺旋体生长的能力进行预先筛选。预先筛选、无菌过滤的兔血清 [产品编号 R7136] 可从 Sigma 获得。
2.使用前，我们建议在无菌条件下为培养基补充预先筛选、无菌过滤的血清，最终浓度为 6%。（参见以下注释）
3.可能添加0.1% NaN作为防腐剂。可以根据需要在无菌条件下添加其他补充剂。
注：为获得理想性能，用于补充培养基的血清应针对其支持伯氏疏螺旋体生长的能力进行预先筛选。预先筛选、无菌过滤的兔血清 [产品编号 R7136] 可从 Sigma 获得。
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为获得最佳结果，用于补充培养基的血清应针对其支持伯氏疏螺旋体生长的能力进行预先筛选。预先筛选、无菌过滤的兔血清 [产品编号 R7136] 可从 Sigma 获得。
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产品编号
说明
价格
儲存類別代碼
10 - Combustible liquids
水污染物質分類（WGK）
WGK 3
閃點（°F）
Not applicable
閃點（°C）
Not applicable
S Y Sung et al.
Infection and immunity, 68(3), 1319-1327 (2000-02-26)
The ospE gene family of the Lyme disease spirochetes encodes a polymorphic group of immunogenic lipoproteins. The ospE genes are one of several gene families that are flanked by a highly conserved upstream sequence called the upstream homology box, or
Gary P Wormser et al.
Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 47(7), 910-914 (2008-08-30)
A potential concern with any serologic test to detect antibodies to Borrelia burgdorferi is whether the epitopes incorporated in the test provide sufficient cross-reactivity to detect infection with all of the pathogenic strains of the species. This is a particular
R J Pollack et al.
Journal of clinical microbiology, 31(5), 1251-1255 (1993-05-01)
To standardize the procedure for isolating and culturing Lyme disease spirochetes, we modified the composition of the medium generally used for this purpose (BSK-II) and developed a system for its distribution. This medium contains no gelatin or agarose, and various
O Brorson et al.
Infection, 25(4), 240-246 (1997-07-01)
The purpose of this study was to evaluate the behaviour of Borrelia burgdorferi under controlled conditions. The occurrence of cystic forms of Borrelia burgdorferi in vitro was noted, and these cysts were able to be transformed to normal, mobile spirochetes.
A G Barbour
The Yale journal of biology and medicine, 57(4), 521-525 (1984-07-01)
The successful isolation and cultivation of Lyme disease spirochetes traces its lineage to early attempts at cultivating relapsing fever borreliae. Observations on the growth of Lyme disease spirochetes under different in vitro conditions may yield important clues to both the
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