Przejdź do zawartości
Merck
Strona głównaOczyszczanie DNA i RNAPrzewodnik dotyczący stosowania proteinazy K w różnych procedurach

Przewodnik dotyczący stosowania proteinazy K w różnych procedurach

Jak rozpuścić Proteinazę K w proszku?

Proteinaza K (Pro K, ProK) jest powszechnie stosowanym enzymem proteazy w biologii molekularnej, często używanym do ekstrakcji DNA lub RNA lub do trawienia białek. Aby przygotować roztwór podstawowy proteinazy K, wykonaj następujące kroki:

1.   Odważ żądaną ilość proszku proteinazy K za pomocą wagi. Ilość będzie zależeć od konkretnego protokołu, ale powszechnie stosowane stężenia wahają się od 10 do 100 mg/ml.

2.   Dodaj proszek proteinazy K do probówki lub pojemnika.

3.   Dodaj odpowiednią objętość buforu lub wody do probówki lub pojemnika. Konkretny użyty bufor lub rozpuszczalnik będzie zależał od zastosowania i stosowanego protokołu. Powszechnie stosowane bufory obejmują Tris-HCl, kwas etylenodiaminotetraoctowy (EDTA) lub bufor TE.

4.   Dobrze wymieszaj zawartość probówki lub pojemnika przez worteksowanie lub pipetowanie w górę i w dół.

5.   Inkubuj probówkę lub pojemnik w zalecanej temperaturze i czasie dla danego protokołu. Proteinaza K jest najczęściej używana w temperaturze 37 °C, chociaż niektóre protokoły mogą wymagać wyższych lub niższych temperatur.

6.   Po inkubacji roztwór proteinazy K jest gotowy do użycia w dalszych zastosowaniach.

Uwaga: Proteinazę K należy przechowywać w temperaturze -20 °C lub niższej, aby zachować jej stabilność i aktywność. Ważne jest, aby chronić proteinazę K przed ekspozycją na ciepło, wilgoć i inne zanieczyszczenia, aby zapewnić optymalną wydajność.

Czy proteinaza K może rozpuszczać się w wodzie?

Proteinaza K (Pro K, Prok) może rozpuszczać się w wodzie, ale konkretny użyty rozpuszczalnik będzie zależał od zastosowania i przestrzeganego protokołu. Proteinaza K jest enzymem proteazy, który może być denaturowany lub inaktywowany przez niektóre rozpuszczalniki lub warunki, dlatego ważne jest, aby postępować zgodnie z instrukcjami producenta lub konkretnym protokołem, aby zapewnić optymalną aktywność.

Podczas gdy proteinaza K jest powszechnie rozpuszczana w wodzie lub roztworach buforowych, takich jak bufor Tris-HCl lub TE, ważne jest, aby pamiętać, że specyficzny bufor lub rozpuszczalnik może wpływać na stabilność enzymu. Na przykład proteinaza K jest inaktywowana przez wysokie stężenia detergentów, takich jak dodecylosiarczan sodu (SDS), dlatego nie należy jej rozpuszczać w roztworach zawierających wysokie stężenia tych odczynników.

Przed rozpuszczeniem proteinazy K w wodzie lub jakimkolwiek innym rozpuszczalniku ważne jest, aby zapoznać się z konkretnym protokołem i instrukcjami producenta, aby upewnić się, że do zamierzonego zastosowania używany jest właściwy rozpuszczalnik i warunki.

Jakie jest najlepsze pH dla proteinazy K?

Optymalne pH dla aktywności proteinazy K wynosi około 8,0 do 9,0. Proteinaza K jest proteazą serynową, która ma szeroką specyficzność do rozszczepiania wiązań peptydowych w białkach. Enzym jest aktywny w szerokim zakresie pH, z pewną aktywnością obserwowaną przy pH 4,0 do 12,0, ale najwyższa aktywność jest zwykle obserwowana przy neutralnych do lekko zasadowych wartościach pH.

Zakres pH oznaczony kolorami od 0 (czerwony) do 14 (fioletowy)

Należy pamiętać, że określone wymagania dotyczące pH mogą się różnić w zależności od zastosowania i używanego protokołu. Na przykład, niektóre protokoły mogą wymagać określonego zakresu pH dla optymalnej lizy lub trawienia określonych substratów lub próbek. Ponadto czynniki takie jak temperatura, stężenie soli i inne odczynniki w reakcji mogą również wpływać na optymalne pH dla aktywności proteinazy K.

Czy proteinaza K działa w temperaturze pokojowej?

Beinaza K jest aktywna w szerokim zakresie temperatur, w tym w temperaturze pokojowej, ale optymalna temperatura dla aktywności proteinazy K wynosi około 37 °C. Chociaż pewna aktywność może być nadal obserwowana w niższych lub wyższych temperaturach, enzym może być mniej wydajny lub wolniejszy w rozszczepianiu wiązań peptydowych w tych temperaturach.

W niektórych przypadkach protokoły mogą wykorzystywać kombinację czasów inkubacji i temperatur w celu optymalizacji aktywności proteinazy K dla konkretnego zastosowania. Na przykład, niektóre protokoły ekstrakcji DNA mogą wykorzystywać krótką inkubację w temperaturze pokojowej, a następnie dłuższą inkubację w temperaturze 55-65 °C, aby zapewnić całkowitą lizę i trawienie składników komórkowych.

Ogólnie rzecz biorąc, podczas gdy proteinaza K może być aktywna w temperaturze pokojowej, optymalną temperaturą dla większości zastosowań jest 37 °C. Ważne jest, aby zoptymalizować warunki inkubacji dla konkretnego używanego protokołu, aby zapewnić optymalną aktywność i wydajność proteinazy K.

Jaki jest czas inkubacji proteinazy K?

Czas inkubacji proteinazy K może się różnić w zależności od konkretnego protokołu i używanego zastosowania. Zalecany czas inkubacji może wynosić od kilku minut do kilku godzin, a nawet nocy, w zależności od zamierzonego zastosowania enzymu.

Na przykład w protokołach ekstrakcji DNA proteinaza K jest często stosowana do trawienia białek komórkowych i innych zanieczyszczeń w celu uwolnienia DNA z komórek. Zalecany czas inkubacji w tym zastosowaniu może wynosić od 30 minut do kilku godzin, w zależności od rodzaju próbki, ilości i innych czynników.

Ogólnie rzecz biorąc, czas inkubacji proteinazy K jest określany poprzez optymalizację wydajności trawienia i minimalizację ryzyka nadmiernego trawienia lub degradacji docelowej próbki lub cząsteczki. Ważne jest, aby postępować zgodnie z określonym protokołem i instrukcjami producenta dotyczącymi zalecanego czasu inkubacji dla zamierzonego zastosowania proteinazy K.

Dodatkowo należy zauważyć, że na czas inkubacji proteinazy K mogą mieć wpływ inne czynniki, takie jak temperatura, pH, stężenie soli i obecność innych odczynników lub inhibitorów. Ważne jest, aby zoptymalizować warunki inkubacji dla konkretnego protokołu, aby zapewnić optymalną aktywność i wydajność.

Co może hamować proteinazę K?

Proteinaza K może być hamowana przez różne czynniki, w tym denaturanty, detergenty i inhibitory proteaz. Podatność proteinazy K na hamowanie może zależeć od konkretnego zastosowania i stosowanego protokołu.

Niektóre powszechne inhibitory proteinazy K obejmują:

1.   SDS: Wysokie stężenia SDS mogą denaturować i inaktywować proteinazę K.

2.   EDTA: EDTA jest środkiem chelatującym, który może wiązać się z jonami metali, które są niezbędne dla aktywności proteinazy K.

3.   Mocznik: Wysokie stężenia mocznika mogą denaturować i inaktywować proteinazę K.

4.   Detergenty: Niektóre detergenty, takie jak Triton X-100 lub Tween® 20 mogą hamować aktywność proteinazy K, szczególnie w wysokich stężeniach.

5.   Inhibitory proteazy: Niektóre inhibitory proteazy, takie jak fluorek fenylometylosulfonylu (PMSF), mogą nieodwracalnie hamować aktywność proteinazy K.

Należy zauważyć, że podatność proteinazy K na hamowanie może zależeć od konkretnego zastosowania i używanego protokołu. Na przykład w niektórych protokołach ekstrakcji DNA obecność soli chaotropowych lub detergentów może zwiększać aktywność proteinazy K, podczas gdy w innych protokołach te same odczynniki mogą hamować enzym.

Podczas stosowania proteinazy K ważne jest, aby postępować zgodnie z określonym protokołem i instrukcjami producenta, aby zoptymalizować aktywność enzymu i zminimalizować ryzyko zahamowania.

Co się stanie, jeśli użyjesz zbyt dużej ilości proteinazy K?

Użycie zbyt dużej ilości proteinazy K może prowadzić do nadmiernego trawienia docelowej próbki lub cząsteczki, co może skutkować degradacją lub utratą aktywności. Optymalna ilość proteinazy K dla konkretnego zastosowania może zależeć od rodzaju próbki, ilości i innych czynników.

Na przykład w protokołach ekstrakcji DNA użycie zbyt dużej ilości proteinazy K może spowodować nadmierne trawienie składników komórkowych i innych zanieczyszczeń, prowadząc do degradacji DNA i zmniejszenia wydajności. Nadmierne trawienie może również powodować uwalnianie niepożądanych inhibitorów, takich jak hem lub kwasy humusowe, które mogą zakłócać dalsze zastosowania.

Nadmierne trawienie może również prowadzić do trawienia docelowej cząsteczki lub struktury. Na przykład w protokołach trawienia białek użycie zbyt dużej ilości proteinazy K może prowadzić do degradacji białka będącego przedmiotem zainteresowania, zmniejszając jego wydajność lub aktywność.

Optymalna ilość proteinazy K może się różnić w zależności od rodzaju próbki, ilości i innych czynników. Zaleca się stosowanie krzywej miareczkowania w celu określenia optymalnej ilości proteinazy K dla konkretnego zastosowania, zamiast stosowania stałej ilości, która może prowadzić do nadmiernego trawienia lub degradacji.

Wykres sigmoidalny pokazujący, jak objętość dodanego titranta zwiększa pH roztworu analitu.

Wykres sigmoidalny pokazujący, jak objętość dodanego titranta zwiększa pH roztworu analitu.


Inne informacje o Proteinazie K

Aby dowiedzieć się, jak Proteinaza K jest używana do ekstrakcji DNA/RNA z krwi, odwiedź Jak Proteinaza K może być stosowana w ekstrakcji DNA z krwi.

Aby dowiedzieć się, jak Proteinaza K jest stosowana do ekstrakcji DNA/RNA z krwi, odwiedź Jak Proteinaza K może być stosowana w próbkach tkanek.

Jak znaleźć najlepszego dostawcę Proteinazy K? Odwiedź .Jak określić najlepszy produkt i dostawcę proteinazy K

Jak zamawiać duże ilości proteinazy K

Dostępne są duże ilości i niestandardowe rozmiary opakowań proteinazy K do konkretnych zastosowań. Wypełnij formularz, aby uzyskać więcej informacji na temat naszej oferty.


Materiały
Przepraszamy, wystąpił nieoczekiwany błąd

Network error: Failed to fetch

Referencje

1.
Gandelman O, Church VL. 2001. Affinity Purification of Proteins Fused to Glutathione S-transferase. 160, 55-64. Methods in Molecular Biology:
2.
Liu D, Wu H. 2010. Proteinase K Digestion. Encyclopedia of Life Sciences: John Wiley & Sons, Ltd.
3.
Qamar W, Khan MR, Arafah A. 2017. Optimization of conditions to extract high quality DNA for PCR analysis from whole blood using SDS-proteinase K method. Saudi Journal of Biological Sciences. 24(7):1465-1469. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2016.09.016
4.
Riemer J, Hoepken HH. 2013. Cysteine-dependent Enzymes in Alzheimer's Disease. Current Alzheimer Research: 10(1), 30-38.
5.
Willems S, Bouckaert J, Wyns L. 1990. The Crystal Structure of the Extracellular Proteinase of Streptomyces Griseus at 1.8 Å Resolution. Journal of Molecular Biology. 213(2):219-232.
Zaloguj się, aby kontynuować

Zaloguj się lub utwórz konto, aby kontynuować.

Nie masz konta użytkownika?

Dla wygody naszych klientów ta strona została przetłumaczona maszynowo. Dołożyliśmy starań, aby zapewnić dokładne tłumaczenie maszynowe. Tłumaczenie maszynowe nie jest jednak doskonałe. Jeśli tłumaczenie maszynowe nie spełnia Twoich oczekiwań, przejdź do wersji w języku angielskim.