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Western Blotting

Western Blotting-Labor. Western Blotting-Verfahren zum Nachweis von Proteinen

Western Blotting ist ein bewährtes Analyseverfahren für Nachweis, Analyse und Quantifizierung von Proteinen. Diese Methode wird häufig zum Nachweis spezifischer Proteinmoleküle in komplexen Proben wie Gewebehomogenaten und Zelllysaten verwendet. Beim Western Blotting werden die Proteine in der Regel durch Gelelektrophorese aufgetrennt und anschließend auf eine Polyvinylidendifluorid- (PVDF) oder Nitrozellulose-Membran übertragen. Nach dem Transfer der Proteine können diese zur Visualisierung angefärbt und durch N-terminale Sequenzierung, Massenspektrometrie oder Immunnachweis direkt identifiziert werden. 

Beim Western Blotting-Immunnachweis werden Proteine durch ihre Bindung an spezifische Antikörper identifiziert. In der Regel wird ein Primärantikörper in Kombination mit einem HRP- oder AP-konjugierten Sekundärantikörper für den chemilumineszenten oder kolorimetrischen Nachweis unter Einsatz eines geeigneten Substrats verwendet. Alternativ kann ein fluoreszenzmarkierter Primär- oder Sekundärantikörper zur direkten Visualisierung verwendet werden.


Zugehörige technische Artikel

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Zugehörige Protokolle

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Western Blotting wird in der Biochemie häufig eingesetzt, um das Vorhandensein spezifischer Proteine nachzuweisen, das Ausmaß posttranslationaler Modifikationen zu bestimmen, die Proteinexpression bei Klonierungsanwendungen zu verifizieren und die Expressionsniveaus von Proteinen und Biomarkern zu analysieren. Darüber hinaus in der Antikörper-Epitopkartierung und in der Klinik für Biomarkertests.

Die Notwendigkeit, mehr Proteine in begrenzten Proben gleichzeitig zu analysieren, hat die Forschung zur Verbesserung der Empfindlichkeit und Geschwindigkeit von Blotting-Techniken vorangetrieben. Durch das Doppelblotting werden falsch-positive Ergebnisse aufgrund unspezifischer Wechselwirkungen vermieden. Far-Western Blotting ermöglicht den Nachweis spezifischer Protein-Protein-Interaktionen. Das South-Western Blotting dient der Identifizierung von Proteinen, die mit bestimmten DNA-Sequenzen interagieren. Durch Multistrip-Blotting wird der Durchsatz erhöht und gleichzeitig die Inter-Blot-Variabilität minimiert. Es werden neue Technologien entwickelt, um die zur Erzeugung eines Signals erforderlichen Proteinmengen zu verringern und die quantitativen Möglichkeiten des Western Blotting zu verbessern.


Workflow

Zelllyse von Proteinen für Western Blotting.

Proteinextraktion

Bei der Arbeit mit Zellen oder Geweben müssen Proben aufgeschlossen werden, um die Proteine vor der Analyse zu isolieren. Bei Lyse- und Extraktionspuffern kommen Detergenzien zum Einsatz, um Zellwände und Membranen aufzubrechen und die Proteine freizusetzen. Der optimale Puffer sollte auf der Grundlage des Probentyps und der subzellulären Lokalisierung des Zielproteins ausgewählt werden.

Gelelektrophoresekammer für Proteingele.

Die Protein-Gelelektrophorese dient dazu, Proteine vor dem Blotting aufzutrennen. Das vorbereitete Proteingemisch durchläuft ein Polyacrylamidgel, um die Proteine nach Molekulargewicht und Ladung zu sortieren.

Transfer von Proteinen auf eine PVDF-Membran zum Nachweis anhand von Western Blotting-Verfahren.

Die auf dem Gel durch Elektrophorese aufgetrennten Proteine werden durch Übertragung auf eine PVDF- oder Nitrozellulose-Membran immobilisiert. Bei der Übertragung wird elektrischer Strom eingesetzt, um Proteine aus dem Gel auf die Membran zu ziehen (Elektroblotting).

Western Blotting-Nachweis des Zielproteins mit primären und HRP-konjugierten Sekundärantikörpern mit Substrat.

Das Zielprotein wird mit einem Primärantikörper in Kombination mit einem HRP- oder AP-konjugierten Sekundärantikörper und einem geeigneten chemilumineszenten oder kolorimetrischen Substrat oder mit fluoreszenzmarkierten Primär- oder Sekundär-Antikörpern nachgewiesen.





Highlights

Protein Blotting Handbook
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