Przejdź do zawartości
Merck

Testy multipleksowe cytokin nowej generacji

Testy multipleksowe cytokin umożliwiają naukowcom łatwe badanie układu odpornościowego i mechanizmów zapalnych. Analiza multipleksowa cytokin oszczędza czas i zasoby dzięki jednoczesnej analizie wielu cytokin. MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A i Panel B to multipleksowe panele cytokin, które oferują lepszą jakość, przepływ pracy i wykrywanie próbek.

Czytaj więcej

Rola cytokin, chemokin i czynników wzrostu

Cytokiny, chemokiny i czynniki wzrostu są kluczowymi mediatorami funkcji układu odpornościowego zdolnymi do sygnalizacji poprzez mechanizmy autokrynne, parakrynne i endokrynne. Ich plejotropowe właściwości immunomodulacyjne pozwalają tym biomolekułom reagować na różnorodne bodźce i regulować odpowiedź immunologiczną, promując lub hamując stan zapalny. Rosnące badania nadal podkreślają rolę układu odpornościowego w każdym aspekcie ludzkiego zdrowia i choroby. MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A i Panel B oferują unikalną kombinację 48 biomarkerów, które mogą być jednocześnie analizowane w małej objętości próbki.

Jakość wbudowana w zestawy MILLIPLEX® Kits

.Rozwój i weryfikacja zestawów obejmuje testowanie selektywności i specyficzności w celu zapewnienia znikomej reaktywności krzyżowej w testowanych typach próbek, a także specyficzności testu w celu zapewnienia spójnej wydajności testu w formatach single-plex i multipleks. multiplex. Bufory i rozcieńczalniki są optymalizowane w celu zwiększenia swoistości przeciwciał, tak aby w próbkach wykrywane były tylko te anality, które są przedmiotem zainteresowania. Matryca surowicy jest również starannie dobrana i zoptymalizowana do użycia w krzywej wzorcowej podczas korzystania z próbek surowicy lub osocza, aby jak najdokładniej naśladować matrycę próbki, normalizując w ten sposób wydajność testu. Stężenie streptawidyny-fykoerytryny (SAPE) jest miareczkowane we własnym zakresie w celu uzyskania optymalnego sygnału i jest dostarczane jako gotowe do użycia bez konieczności rozcieńczania. Ponadto wszystkie nasze zestawy są rygorystycznie testowane pod kątem stabilności wysyłki, a próbki są również testowane pod kątem tolerancji na temperaturę i zamrażanie/rozmrażanie.

Rozcieńczenie próbki jest zoptymalizowane dla każdego analitu w zestawie, zapewniając, że istotne biologicznie wartości próbki są wykrywalne i mieszczą się w zakresie dynamicznym krzywych standardowych. Próbki testowane dla tego zestawu obejmują normalne i chore próbki surowicy i osocza, a także supernatanty komórek jednojądrzastych krwi obwodowej (PBMC, niestymulowane i stymulowane różnymi czynnikami). Kontrole jakości (QC), które są niskimi i wysokimi rozcieńczeniami rekombinowanych białek dla każdego analitu, są wytwarzane w taki sposób, że dwie QC (wysoka i niska) mają optymalne położenie na każdej krzywej standardowej. Arkusze zakresów QC są dostarczane z każdym zestawem. Ponadto zawsze zalecamy użytkownikom dołączenie próbek specyficznych dla eksperymentu do wykorzystania jako kontrole w każdym teście.

Dowiedz się więcej w naszym artykule na temat jakości zestawów MILLIPLEX®.

Ulepszenia przepływu pracy

Analizy zawierające 48 indywidualnych biomarkerów w jednym panelu stanowią potężne narzędzie do badań. Możliwość wyboru wszystkich analitów i zawężenia ich do podzbioru analitów w miarę kontynuowania projektu pozwala badaczom na elastyczność potrzebną do wydajnej pracy. Wykrywanie cytokin na poziomie pg/mL z zakresami krzywych standardowych, które nie zmieniają się z partii na partię, sprawia, że test jest bardzo przyjazny dla użytkownika. Spójne krzywe standardowe z partii na partię zapewniają spójne wyniki próbek w całym projekcie (rysunek 1).

MILLIPLEX<sup>®</sup> Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Multiplex Panel A (nr kat. HCYTA60K) i Panel B (nr kat. HCYTB60K) 48-pleksowe krzywe wzorcowe dla wszystkich analitów.

Rysunek 1.Krzywe standardowe 48-pleksów w panelach A i B były oznaczane w matrycy surowicy, z wyjątkiem *RANTES, który był oznaczany w buforze testowym. Każdy zestaw został przeprowadzony przy użyciu protokołu testu MILLIPLEX® overnight.

Panele MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A i Human Cytokine Panel B mają prosty protokół ze znanym przepływem pracy, w którym każdy krok jest opisany w celu zapewnienia łatwości użytkowania.

Kolejnym ulepszeniem testu w stosunku do MILLIPLEX® Human Cytokine Panel A jest to, że PDGF-AA i PDGF-AB/BB można teraz badać za pomocą czystych próbek surowicy i osocza, więc nie ma potrzeby rozcieńczania próbek, jak ma to miejsce w przypadku poprzednich zestawów MILLIPLEX®.sup>® lub innych zestawów opartych na technologii Luminex® dostępnych na rynku. RANTES, będąc wysoce wyrażonym w próbkach surowicy i osocza, nadal wymaga oddzielnego rozcieńczenia próbki w surowicy i osoczu w stosunku 1:100.

Proste ulepszenie testu polegające na logicznym uporządkowaniu regionów kulek i nazw analitów w kolejności numeryczno-alfabetycznej, pozwala badaczom szybko zlokalizować określone anality w plikach wyjściowych wyników znacznie łatwiej niż w przypadku poprzednich testów.

Wykrywalność próbek

Panel ludzkich cytokin A

Oprócz ulepszeń w krzywych standardowych w stosunku do porównawczych testów analitów dla MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A, istnieje również poprawa wydajności analitu pod względem wykrywania próbki. Jednym z celów przy opracowywaniu tego panelu było ścisłe dopasowanie wartości próbek do porównawczych zestawów MILLIPLEX® (nr kat. HCYTOMAG-60). Nr kat. HCYTOMAG-60K, HCYP3MAG-63K, lub HTH17MAG-14K). Warto zauważyć, że trzy testy analitów zostały dostosowane, aby lepiej odpowiadały wartościom akceptowanym w literaturze: GROα1,2, IL-41 i IL-223,4,5. Rysunki 2 i 3 pokazują, w jaki sposób panel ten został wykorzystany odpowiednio do analizy próbek chorobowych i stymulowanych PBMC.

Wykresy przedstawiające badanie próbek sepsy w porównaniu z próbkami normalnymi za pomocą MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A (nr kat. HCYTA-60K) dla IL-6, IL-8, IL-18, IL-27, M-CSF i MIG.

Rysunek 2.Zdrowe kontrolne próbki surowicy/osocza (uzyskane od BioIVT) i próbki surowicy/osocza pacjentów z sepsą (uzyskane od BioIVT, Discovery i BioChemed) zostały przetestowane w postaci czystej (25 μL/basenik) w panelu A ludzkich cytokin/hemokin/czynników wzrostu MILLIPLEX®. Zdrowe kontrolne próbki surowicy/osocza, N=20. Próbki surowicy/osocza z sepsą, N=16.

Wykresy przedstawiające badanie stymulowanych PBMC za pomocą MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A (nr kat. HCYTA-60K) dla odpowiedzi G-CSF, GM-CSF, GROα, IFNƴ, IL-1β i IL-5.

Rysunek 3.Próbki ludzkich PBMC (uzyskane od BioIVT) w RPMI zawierającym 10% FBS i 1% penicyliny/streptomycyny przy 106 komórkach/ml inkubowano z 1 μg/ml LPS lub Con A przez 48 godzin w temperaturze 37 °C, po czym zebrano supernatanty wolne od komórek i przetestowano za pomocą panelu A ludzkich cytokin/hemokin/czynników wzrostu MILLIPLEX®.

Więcej szczegółów można znaleźć w naszym MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel A application note.

Panel ludzkich cytokin B

Zestaw 48-pleksowy MILLIPLEX® Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Panel B został przetestowany w porównaniu z innymi zestawami marki Luminex®.sup>® Brand, w tym Brand 1, który oferuje test odkrywczy i test wydajnościowy, który podobno obejmuje wyższy poziom weryfikacji testu.

W tym porównaniu testy odkrywcze Brand 1 są określane jako Brand 1D, a testy wydajnościowe są określane jako Brand 1P. MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B został również porównany z innymi zestawami partnerskimi Luminex®, tutaj określanymi jako Brand 2 i Brand 3.

Granzym B w MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B wykazał 100% wykrywalność próbki zarówno w zdrowej, jak i chorej surowicy i osoczu (rysunek 4A). I odwrotnie, marka 1P miała tylko 2 wykrywalne próbki chorobowe i żadna ze zdrowych próbek nie została odczytana powyżej tła. Test odkrywczy tej samej marki wykazał lepszą wykrywalność próbek, która była porównywalna pod względem zakresu próbek dla zdrowych i chorych próbek do MILLIPLEX® Human Panel B. Zgodnie z wyszukiwaną literaturą, typowe poziomy Granzymu B powinny mieścić się w przedziale 2-50 pg/ml,6,7 przy średniej próbce zdrowej surowicy i osocza panelu MILLIPLEX® na poziomie 8.

W przypadku ligandu indukującego apoptozę związanego z TNF (TRAIL), wszystkie zdrowe i chore próbki były wykrywalne przy użyciu MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B. Marka 1P miała 9/16 (56%) wykrywalnych próbek choroby. Jako regulator odpowiedzi immunologicznej w sepsie, obniżone poziomy TRAIL w sepsie były związane ze złymi wynikami.8 MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B podążał za tym trendem obniżonego stężenia TRAIL w próbkach stanu chorobowego, w tym w sepsie, co zostało również wykazane w mniejszym stopniu w innych panelach multipleksowych marki (rysunek 4B). Wykazano, że zdrowy poziom TRAIL wynosi średnio około 50-100 pg/ml, co jest zgodne z wynikami MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B.

MIP-3β był wykrywalny w 100% zdrowych próbek surowicy i osocza przy użyciu zestawu MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B. W porównaniu z innymi zestawami marki, średnie wyniki były zgodne z zestawami marki 2 i marki 3 i były zgodne z zakresami literaturowymi.9 Zestawy marki 1D i 1P wykazały fałszywie dodatnie wyniki w dwóch próbkach, odczytując prawie 3-krotnie wyższe niż inne zdrowe próbki w 5 zestawach multipleksowych (rysunek 4C). Zestawy marek 2 i 3 miały wykrywalne poziomy MIP-3β w 89% próbek surowicy i osocza, w tym w próbkach w stanie chorobowym (dane nie pokazane).

CXCL6/GCP-2 wykazał 100% wykrywalność próbki przy użyciu zestawu MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B ze średnimi wartościami zgodnymi z zestawami marek 2 i 3. MILLIPLEX® Panel B był również zgodny z zakresami literaturowymi 40-350 pg/mL.10 Podobnie jak w przypadku innych analitów, zestaw marki 1D ponownie wykazał fałszywie dodatnie wyniki przy średnim stężeniu zdrowej próbki prawie czterokrotnie wyższym niż w przypadku innych testów (rysunek 4D). Tylko 55% zdrowych próbek było wykrywalnych przy użyciu testu multipleksowego marki 2, który miał ogólny wskaźnik wykrywalności próbek na poziomie 58%, biorąc pod uwagę również próbki w stanie chorobowym (dane nie pokazane).

W niektórych przypadkach stężenia próbek w MILLIPLEX® Human Panel B mogą nie odpowiadać poprzednim zestawom, ale są teraz bardziej zgodne z zakresami literaturowymi. Obejmuje to anality takie jak BAFF,11 HMGB1,12 SCF,13 IL-28A,14 i IL-23.15

Wykresy przedstawiające porównanie stężeń próbek Granzymu B, TRAIL, MIP-3β i CXCL6/GCP-2 przy użyciu MILLIPLEX<sup>®</sup> Human Cytokine/Chemokine/Growth Factor Multiplex Panel B (nr kat. HCYTB60K) i innych zestawów multipleksowych marki Luminex<sup>®</sup>.

Rysunek 4.Porównanie stężenia próbki MILLIPLEX® Human Cytokine Panel B z innymi zestawami multipleksowymi marki Luminex®. Przedstawiono reprezentatywne dane dla (A) granzymu B, (B) TRAIL, (C) MIP-3β i (D) CXCL6/GCP-2. Próbki testowe obejmowały zdrowe (n=20) i chore (sepsa i RZS; n=16) próbki surowicy i osocza.

Tylko do użytku badawczego. Nie do użytku w procedurach diagnostycznych.


Ostatnie publikacje wykorzystujące panele ludzkich cytokin MILLIPLEX®

 

.

Referencje

1.
Kleiner G, Marcuzzi A, Zanin V, Monasta L, Zauli G. 2013. Cytokine Levels in the Serum of Healthy Subjects. Mediators of Inflammation. 20131-6. https://doi.org/10.1155/2013/434010
2.
Mitsuyama K, Tsuruta O, Tomiyasu N, Takaki K, Suzuki A, Masuda J, Yamasaki H, Toyonaga A, Sata M. 2006. Increased Circulating Concentrations of Growth-Related Oncogene (GRO)-? in Patients with Inflammatory Bowel Disease. Dig Dis Sci. 51(1):173-177. https://doi.org/10.1007/s10620-006-3104-4
3.
Lin J, Yue LH, Chen WQ. 2014. Decreased Plasma IL-22 Levels and Correlations with IL-22-Producing T Helper Cells in Patients with New-Onset Systemic Lupus Erythematosus. Scand J Immunol. 79(2):131-136. https://doi.org/10.1111/sji.12135
4.
Herder C, Kannenberg JM, Carstensen-Kirberg M, Huth C, Meisinger C, Koenig W, Peters A, Rathmann W, Roden M, Thorand B. 2017. Serum levels of interleukin-22, cardiometabolic risk factors and incident type 2 diabetes: KORA F4/FF4 study. Cardiovasc Diabetol. 16(1): https://doi.org/10.1186/s12933-017-0498-6
5.
Oliveira PSSd, Cardoso PRG, Lima EVdA, Pereira MC, Duarte ALBP, Pitta IdR, Rêgo MJBdM, Pitta MGdR. 2015. IL-17A, IL-22, IL-6, and IL-21 Serum Levels in Plaque-Type Psoriasis in Brazilian Patients. Mediators of Inflammation. 20151-5. https://doi.org/10.1155/2015/819149
6.
Iłżecka J. 2011. Granzymes A and B levels in serum of patients with amyotrophic lateral sclerosis. Clinical Biochemistry. 44(8-9):650-653. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2011.02.006
7.
Chung JH, Yoon SH, Jeon D, Choi HJ, Moon K, Kwon S, Saputra HA, Kim YS, Shim Y. 2022. The feasibility of granzyme B levels using an amperometric immunosensor for lung cancer detection. Ann Transl Med. 10(11):622-622. https://doi.org/10.21037/atm-22-470
8.
Schenck EJ, Ma KC, Price DR, Nicholson T, Oromendia C, Gentzler ER, Sanchez E, Baron RM, Fredenburgh LE, Huh J, et al. 2019. Circulating cell death biomarker TRAIL is associated with increased organ dysfunction in sepsis. 4(9): https://doi.org/10.1172/jci.insight.127143
9.
Agalliu I, Xue X, Cushman M, Cornell E, Hsing AW, Kaplan RC, Anastos K, Rajpathak S, Ho GY. 2013. Detectability and reproducibility of plasma levels of chemokines and soluble receptors. Results in Immunology. 379-84. https://doi.org/10.1016/j.rinim.2013.07.001
10.
Bahudhanapati H, Tan J, Apel RM, Seeliger B, Li X, Chen T, Sullivan D, Sembrat J, Rojas M, Tabib T, et al. High CXCL6 drives matrix expression and correlate with markers of poor outcome in IPF. https://doi.org/10.1101/2021.06.22.449424
11.
Lunde S, Kristoffersen EK, Sapkota D, Risa K, Dahl O, Bruland O, Mella O, Fluge Ø. Serum BAFF and APRIL Levels, T-Lymphocyte Subsets, and Immunoglobulins after B-Cell Depletion Using the Monoclonal Anti-CD20 Antibody Rituximab in Myalgic Encephalopathy/Chronic Fatigue Syndrome. PLoS ONE. 11(8):e0161226. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161226
12.
Gaïni S, Pedersen S, Koldkjær O, Pedersen C, Møller H. 2007. High mobility group box-1 protein in patients with suspected community-acquired infections and sepsis: a prospective study. Crit Care. 11(2):R32. https://doi.org/10.1186/cc5715
13.
Kitoh T, Ishikawa H, Ishii T, Nakagawa S. 1998. Elevated SCF levels in the serum of patients with chronic renal failure. British Journal of Haematology. 102(5):1151-1156. https://doi.org/10.1046/j.1365-2141.1998.00902.x
14.
Yang Y, Chen J, Yi C, Yang F, Tang M, Li Z, Bai X. 2022. Assessment of serum interleukin-28 as a biomarker to predict mortality in traumatic patients with sepsis. Cytokine. 157155959. https://doi.org/10.1016/j.cyto.2022.155959
15.
Ljujic B, Radosavljevic G, Jovanovic I, Pavlovic S, Zdravkovic N, Milovanovic M, Acimovic L, Knezevic M, Bankovic D, Zdravkovic D, et al. 2010. Elevated Serum Level of IL-23 Correlates with Expression of VEGF in Human Colorectal Carcinoma. Archives of Medical Research. 41(3):182-189. https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2010.02.009
Zaloguj się, aby kontynuować

Zaloguj się lub utwórz konto, aby kontynuować.

Nie masz konta użytkownika?