MABD402
Przeciwciało przeciwko neuroblastom, klon Nilo2
clone Nilo2, from hamster(Armenian)
Synonim(y):
Neuroblasts, Neuronal progenitors, Type A cells
Zaloguj się, aby wyświetlić ceny organizacyjne i kontraktowe.
Wybierz wielkość
Zmień widok
| Gabaryty przesyłki | SKU | Dostępność | Cena netto |
|---|---|---|---|
| 100 μg | Przewidywany termin wysyłki26 marca 2026zKuehne + Nagel Sp. z o.o. | 2110,00 zł |
Informacje o tej pozycji
UNSPSC Code:
12352203
NACRES:
NA.41
eCl@ss:
32160702
Clone:
Nilo2, monoclonal
Species reactivity:
mouse
Application:
FACS, IHC, IP, MRI, WB, inhibition assay
Citations:
-
Pomoc techniczna
Potrzebujesz pomocy? Nasz zespół doświadczonych naukowców chętnie Ci pomoże.
Pozwól nam pomócbiological source
hamster (Armenian)
Quality Level
antibody form
purified antibody
antibody product type
primary antibodies
clone
Nilo2, monoclonal
species reactivity
mouse
technique(s)
flow cytometry: suitable, immunohistochemistry: suitable, immunoprecipitation (IP): suitable, inhibition assay: suitable, magnetic resonance imaging (MRI): suitable, western blot: suitable
shipped in
ambient
target post-translational modification
unmodified
Powiązane kategorie
General description
Podobnie jak w przypadku innych typów komórek, komórki nerwowe są generowane z pierwotnych komórek progenitorowych znanych jako astrocyty typu B lub neuronalne komórki macierzyste (NSC) poprzez etapy amplifikacji (przejściowe komórki wzmacniające), co skutkuje generowaniem pośrednich komórek prekursorowych (iPC) zaangażowanych w neurony (nIPC), astrocyty (aIPC) lub oligodendrocyty (oIPC). W mózgu dorosłych gryzoni NSC i iPC są głównie ograniczone do nisz w strefie podkomorowej (SVZ) komór bocznych (LV). W dorosłej SVZ komórki typu B (SVZB) generują neuroblasty (komórki typu A, prekursory neuronów) poprzez wysoce proliferacyjną populację wzmacniającą tranzyt (komórki typu C). NSC i iPC odgrywają ważną rolę w neurogenezie w dorosłym mózgu. Wiadomo na przykład, że neuroblasty migrują ze swojej niszy SVZ przez rostralny strumień migracyjny (RMS) do opuszki węchowej w celu ciągłego generowania interneuronów peryglomerularnych. Oprócz utrzymywania homeostazy opuszki węchowej, wykazano, że zarówno neuroblasty, jak i NSC mobilizują się ze swoich nisz SVZ do różnych miejsc uszkodzenia mózgu spowodowanych wzrostem guza, kriolezją, ogniskową demielinizacją i uszkodzeniem mechanicznym.
~150-170 kDa (glikozylowane) zgłoszone (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Immunogen
Neurosfery pochodzące z opuszki węchowej zarodka myszy E13.5 FVB (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Application
Analiza rezonansu magnetycznego (MRI): Reprezentatywna partia, po sprzężeniu z magnetycznymi glikonanocząsteczkami (mGNP) i wstrzyknięciu myszom, umożliwiła śledzenie znakowanych neuroblastów migrujących z ich nisz w kierunku miejsc uszkodzenia mózgu za pomocą MRI (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129; Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466).
Analiza cytometrii przepływowej: Reprezentatywna partia, sprzężona z magnetycznymi glikonanocząsteczkami (mGNP) lub nie, immunobarwiła powierzchnię pojedynczych komórek pochodzących z neurosfer SVZ (Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466).
Analiza cytometrii przepływowej: Supernatant z hodowli hybrydoma klonu Nilo2 wybarwił powierzchnię 98% i 95% komórek pochodzących z neurosfery odpowiednio z opuszki węchowej zarodka myszy (OB) i strefy podkomorowej dorosłej myszy (SVZ) (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunocytochemiczna: Reprezentatywna partia immunobarwionych wczesnych neuronalnych komórek prekursorowych poprzez fluorescencyjne barwienie immunocytochemiczne hodowanych neurosfer lub pochodzących z neurosfer pojedynczych komórek utrwalonych 4% paraformaldehydem. W przeciwieństwie do Nilo1 (nr kat. MABD401), niewielki odsetek komórek zachował immunoreaktywność Nilo2 nawet 7 dni po indukcji różnicowania przez odstawienie EGF i bFGF w hodowlach neurosfer (Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466; Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunofluorescencji: Reprezentatywne partie, po wstrzyknięciu myszom, pozwoliły na wykrycie znakowanych neuroblastów migrujących w kierunku miejsc uszkodzenia mózgu z powodu wzrostu guza CT-2A lub uszkodzenia mechanicznego poprzez stereotaktyczne wstrzyknięcie PBS (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129; Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466).
Analiza immunofluorescencyjna: Reprezentatywne partie immunobarwiły postmitotyczne prekursory neuronalne (np. neuroblasty typu 1), podczas gdy Nilo1 (nr kat. MABD401) barwił quiescent neuronalne komórki progenitorowe w strefie podkomorowej (SVZ) za pomocą fluorescencyjnej immunohistochemii przy użyciu 4% utrwalonych paraformaldehydem pływających skrawków dorosłych myszy (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129; Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466; Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunohistochemiczna: Reprezentatywna partia immunobarwiła cienką warstwę komórek w obszarze okołokomorowym wewnątrz przedniej SVZ (SVZa) na początku RMS, w odróżnieniu od małej populacji komórek wyściełającej komorę SVZ barwioną przez Nilo1 (nr kat. MABD401). Zarówno Nilo1 jak i Nilo2 wybarwiały warstwy ependymalne i subependymalne w rdzeniu opuszki węchowej dorosłej myszy, żaden z klonów nie wybarwiał zakrętu zębatego (DG) hipokampa (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunoprecypitacji: Reprezentatywna partia immunoprecypitowała glikoproteinę ~150-170 kDa z ekstraktów błony komórkowej neurosfery i z lizatów komórek neurosfery SVZ (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza inhibicji: Reprezentatywna partia hamowała różnicowanie neurosfer pochodzących z SVZ dorosłych myszy w hodowli, jak również proliferację pojedynczych komórek pochodzących z neurosfer (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza Western Blotting: Reprezentatywna partia wykryła glikoproteinę o masie ~150-170 kDa w immunoprecypitatach uzyskanych przez klon Nilo2 z ekstraktów błony komórkowej neurosfery i z lizatów komórek neurosfery SVZ (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza cytometrii przepływowej: Reprezentatywna partia, sprzężona z magnetycznymi glikonanocząsteczkami (mGNP) lub nie, immunobarwiła powierzchnię pojedynczych komórek pochodzących z neurosfer SVZ (Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466).
Analiza cytometrii przepływowej: Supernatant z hodowli hybrydoma klonu Nilo2 wybarwił powierzchnię 98% i 95% komórek pochodzących z neurosfery odpowiednio z opuszki węchowej zarodka myszy (OB) i strefy podkomorowej dorosłej myszy (SVZ) (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunocytochemiczna: Reprezentatywna partia immunobarwionych wczesnych neuronalnych komórek prekursorowych poprzez fluorescencyjne barwienie immunocytochemiczne hodowanych neurosfer lub pochodzących z neurosfer pojedynczych komórek utrwalonych 4% paraformaldehydem. W przeciwieństwie do Nilo1 (nr kat. MABD401), niewielki odsetek komórek zachował immunoreaktywność Nilo2 nawet 7 dni po indukcji różnicowania przez odstawienie EGF i bFGF w hodowlach neurosfer (Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466; Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunofluorescencji: Reprezentatywne partie, po wstrzyknięciu myszom, pozwoliły na wykrycie znakowanych neuroblastów migrujących w kierunku miejsc uszkodzenia mózgu z powodu wzrostu guza CT-2A lub uszkodzenia mechanicznego poprzez stereotaktyczne wstrzyknięcie PBS (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129; Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466).
Analiza immunofluorescencyjna: Reprezentatywne partie immunobarwiły postmitotyczne prekursory neuronalne (np. neuroblasty typu 1), podczas gdy Nilo1 (nr kat. MABD401) barwił quiescent neuronalne komórki progenitorowe w strefie podkomorowej (SVZ) za pomocą fluorescencyjnej immunohistochemii przy użyciu 4% utrwalonych paraformaldehydem pływających skrawków dorosłych myszy (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129; Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466; Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunohistochemiczna: Reprezentatywna partia immunobarwiła cienką warstwę komórek w obszarze okołokomorowym wewnątrz przedniej SVZ (SVZa) na początku RMS, w odróżnieniu od małej populacji komórek wyściełającej komorę SVZ barwioną przez Nilo1 (nr kat. MABD401). Zarówno Nilo1 jak i Nilo2 wybarwiały warstwy ependymalne i subependymalne w rdzeniu opuszki węchowej dorosłej myszy, żaden z klonów nie wybarwiał zakrętu zębatego (DG) hipokampa (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza immunoprecypitacji: Reprezentatywna partia immunoprecypitowała glikoproteinę ~150-170 kDa z ekstraktów błony komórkowej neurosfery i z lizatów komórek neurosfery SVZ (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza inhibicji: Reprezentatywna partia hamowała różnicowanie neurosfer pochodzących z SVZ dorosłych myszy w hodowli, jak również proliferację pojedynczych komórek pochodzących z neurosfer (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Analiza Western Blotting: Reprezentatywna partia wykryła glikoproteinę o masie ~150-170 kDa w immunoprecypitatach uzyskanych przez klon Nilo2 z ekstraktów błony komórkowej neurosfery i z lizatów komórek neurosfery SVZ (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
To chomicze przeciwciało monoklonalne przeciwko neuroblastom, klon Nilo2, nr kat. MABD402 jest zatwierdzone do stosowania w cytometrii przepływowej, immunocytochemii, immunohistochemii, immunofluorescencji, immunoprecypitacji, obrazowaniu rezonansu magnetycznego, inhibicji i Western Blotting.
Research Category
Stem Cell Research
Stem Cell Research
Biochem/physiol Actions
Nilo (Neural Identification Lineage from Olfactory bulb) przeciwciało monoklonalne Nilo2 (nr kat. MABD402) celuje w neuroblasty (Elvira, G., et al. (2012). PLoS One. 7(9):e44466), podczas gdy Nilo1 (nr kat. MABD401) rozpoznaje neuronalne komórki macierzyste (NSC; astrocyty typu B) w mózgu dorosłej myszy i glej promienisty w zarodku myszy (Elvira, G., et al. (2015). Stem Cell Res. 14(1):114-129). Klon Nilo1 zidentyfikował wczesne komórki progenitorowe (Sox2+, EGFR+, GFAP+ i wimentyna+), podczas gdy Nilo2 zidentyfikował bardziej zróżnicowane neuronalne komórki progenitorowe zaangażowane w szlak neuroblastów (Tuj-1+, PSA-NCAM+ i DCX+). Nilo1 i Nilo2 zatrzymują proliferację neurosfery in vitro i zakłócają ich różnicowanie w dojrzałe komórki nerwowe poprzez celowanie w różne glikoproteiny powierzchniowe o dużym znaczeniu dla biologii neuronalnych komórek macierzystych/wczesnych komórek progenitorowych (Del Valle, I., et al. (2010). Neuroscience. 169(3):1473-1485).
Physical form
Format: Oczyszczony
Oczyszczone przeciwciało monoklonalne chomika ormiańskiego w PBS bez konserwantów.
Protein G purified.
Preparation Note
Przechowywać przez 1 rok w temperaturze -20°C od daty otrzymania.
Zalecenia dotyczące postępowania: Po otrzymaniu i przed zdjęciem nasadki odwirować fiolkę i delikatnie wymieszać roztwór. Rozdzielić do probówek do mikrowirówki i przechowywać w temperaturze -20°C. Unikać powtarzających się cykli zamrażania/rozmrażania, które mogą uszkodzić IgG i wpłynąć na działanie produktu.
Zalecenia dotyczące postępowania: Po otrzymaniu i przed zdjęciem nasadki odwirować fiolkę i delikatnie wymieszać roztwór. Rozdzielić do probówek do mikrowirówki i przechowywać w temperaturze -20°C. Unikać powtarzających się cykli zamrażania/rozmrażania, które mogą uszkodzić IgG i wpłynąć na działanie produktu.
Analysis Note
Evaluated by Immunohistochemistry in C57BL/6 mouse brain sections.
Immunohistochemistry Analysis: A 1:1,000 dilution of this antibody immunostained neuroblasts in subventricular zone (SVZ) of the lateral ventricle (LV) of 4% paraformaldehyde-fixed free-floating C57BL/6 mouse brain sections.
Immunohistochemistry Analysis: A 1:1,000 dilution of this antibody immunostained neuroblasts in subventricular zone (SVZ) of the lateral ventricle (LV) of 4% paraformaldehyde-fixed free-floating C57BL/6 mouse brain sections.
Other Notes
Stężenie: Należy zapoznać się z arkuszem danych dla konkretnej partii.
Disclaimer
Unless otherwise stated in our catalog or other company documentation accompanying the product(s), our products are intended for research use only and are not to be used for any other purpose, which includes but is not limited to, unauthorized commercial uses, in vitro diagnostic uses, ex vivo or in vivo therapeutic uses or any type of consumption or application to humans or animals.
Ta strona może zawierać tekst przetłumaczony maszynowo.
Nie możesz znaleźć właściwego produktu?
Wypróbuj nasz Narzędzie selektora produktów.
Klasa składowania
12 - Non Combustible Liquids
wgk
WGK 2
Certyfikaty analizy (CoA)
Poszukaj Certyfikaty analizy (CoA), wpisując numer partii/serii produktów. Numery serii i partii można znaleźć na etykiecie produktu po słowach „seria” lub „partia”.
Masz już ten produkt?
Dokumenty związane z niedawno zakupionymi produktami zostały zamieszczone w Bibliotece dokumentów.
Numer pozycji handlu globalnego
| SKU | NUMER GTIN |
|---|---|
| MABD402 | 04054839088568 |
Active Filters
Nasz zespół naukowców ma doświadczenie we wszystkich obszarach badań, w tym w naukach przyrodniczych, materiałoznawstwie, syntezie chemicznej, chromatografii, analityce i wielu innych dziedzinach.
Skontaktuj się z zespołem ds. pomocy technicznej