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qPCR效率测定实验方案

qPCR条件优化

QPCR 条件的优化对于制定稳健的检测方案非常重要。优化不佳的表现是重复样本之间缺乏再现性,以及检测低效且不灵敏。两种主要优化方法是优化引物浓度和/或退火温度。

优化了测定后,重要的是验证反应效率。在报告和比较测定方案时,此处信息非常重要。在本文的实验方案示例中,比较了在广泛和狭窄的cDNA浓度动态范围上的测定效率。在实践中,通常根据样品的预期目标范围来选择一个单个测试范围,因此可以根据实验要求调整给定的实验方案。在本文的示例中,使用10倍和2倍连续稀释液计算效率。标准曲线应包含目标基因的预​​期表达范围。注意,使用ReadyScriptt®RT试剂盒时,cDNA产量与RNA输入的比例是线性的,因此如果使用RT-qPCR系统的话,可通过下列操作将本文的实验方案改编成适用于那个系统的:1)稀释RNA,并运行RT反应;2)然后在每个得到的cDNA样品上运行qPCR(相关示例请参见)。  然而,情况并非总是如此,并不适用于所有逆转录试剂盒或实验方案。在将此实验方案改编用于替代试剂盒之前,应进行验证。 

设备

  • 定量PCR仪器
  • PCR设置的层流罩(选购件)

试剂

  • 用作标准曲线模板(例如cDNA、gDNA或合成模板)的DNA
  • KiCqStart SYBR®Green ReadyMix™ (KCQS00/KCQS01/KCQS02/KCQS03—取决于仪器,参见
    表 P4-6)。
  • PCR级水:PCR级水(W1754W4502),20mL等分试样;冻存;每次反应均使用新鲜的等分试样。
  • 用于测试基因的正向和反向引物(10 μM储备)。 
热启动预混液 (Taq,Buffer,dNTPs,参考燃料,MgCl2)
KiCqStart® SYBR® Green qPCR ReadyMix™
货号 KCQS00)
KiCqStart® SYBR® Green qPCR ReadyMix™ Low Rox
(货号KCQS01)
KiCqStart® SYBR® Green qPCR ReadyMix™ 带ROX
货号 KCQS02)
KiCqStart® SYBR® Green qPCR ReadyMix™ 用于 iQ
货 KCQS03)
兼容仪器:兼容仪器:兼容仪器:兼容仪器:
Bio-Rad CFX384™Applied Biosystems 7500Applied Biosystems 5700Bio-Rad iCycler iQ™
Bio-Rad CFX96™Applied Biosystems 7500Applied Biosystems 7000Bio-Rad iQ™5
Bio-Rad MiniOpticon™Fast Applied Biosystems ViiA 7Applied Biosystems 7300Bio-Rad MyiQ™
Bio-Rad MyiQ™Stratagene Mx3000P®Applied Biosystems 7700 
Bio-Rad/MJ Chromo4™Stratagene Mx3005P™Applied Biosystems 7900 
Bio-Rad/MJ Opticon 2Stratagene Mx4000™Applied Biosystems 7900 HT Fast 
Bio-Rad/MJ Opticon® Applied Biosystems 7900HT 
Cepheid SmartCycler® Applied Biosystems StepOnePlus™ 
Eppendorf Mastercycler® ep realplex Applied Biosystems StepOne™ 
Eppendorf Mastercycler® ep realplex2 s   
Illumina Eco qPCR   
Qiagen/Corbett Rotor-Gene® 3000   
Qiagen/Corbett Rotor-Gene® 6000   
Qiagen/Corbett Rotor-Gene® Q   
Roche LightCycler® 480   
表 P17-42.SYBR® Green PCR Mix™选择指南

耗材

本方案注意事项

  • 使用随机引发或oligo-dT方法生成cDNA(参见标准逆转录实验方案(两步法))。稀释RT产物以制备标准曲线(作为示例给出1:2和1:10)。也可以稀释RNA,而且可以使用ReadyScript® 试剂盒从每个稀释液中合成cDNA,或者通过稀释RNA,采用逆转录实验方案(一步SYBR® Green I 染料检测)和逆转录实验方案(一步探针检测)中的一步RT-qPCR法。另外,可以替换DNA模板,使得预期的Cq范围在Cq15至Cq38内。
  • 对连续稀释液的每个浓度都重复进行反应。

方法

1.    按表P16-40制备足以进行40次反应的qPCR预混液。只进行32次反应,额外
的液体作为移液出错时备用(表P16-41)。

试剂每次
单次20 μL反应的体积 (μL)
40次
反应的体积(μL)
2× KiCqStart® SYBR® Green qPCR
ReadyMix™
10400
正向引物 (10 μM)0.936
反向引物 (10 μM)0.936
PCR级纯水3.2128
表P16-40.用于生成1:2和1:10标准曲线的反应预混液。

2.    2. 对DNA进行一系列1:10和1:2稀释,每个系列覆盖7个稀释点(见表P16-41,DNA稀释板布局)。

3.    向已标识好的孔中加入5 μL的适当的模板稀释液(参见表P16-41,DNA稀释板布局)。

DNA稀释板布局

的列号
1234板的其余部分
A1111 
B0.10.10.50.5 
C0.010.010.250.25 
D0.0010.0010.1250.125 
E0.00010.00010.06250.0625 
F0.000010.000010.031250.03125 
G0.0000010.0000010.0156250.015625 
HNTCNTCNTCNTC 
表P16-41.96孔板布局的前四列示意图,显示了标准曲线模板稀释的位置。所述稀释是相对于原始原液而言的。当使用人工模板时,可以计算拷贝数(相对于OD读数)。

4.    每孔加入15 μL预混液(见表P16-41)。

5.    给试管盖上盖子,或密封好板子,并贴上标签。(确保标签不会遮挡仪器的激发/检测
光路。)

6.    根据以下两步方案操作样品。重复执行第1-2步40次。接着
用标准解离曲线分析进行扩增。

循环条件温度 (°C)时间(秒)
初始变性 / 热启动9530
步骤1-2重复40个循环
第1步955
第2步6030
表P16-42.生成标准曲线的 PCR 循环条件。

说明:使用标准解离曲线实验方案(数据收集)。

材料
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