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アンチセンスオリゴヌクレオチド

アンチセンス遺伝子調節の一般的なメカニズムのいくつかと、さらに重要な点として、アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)設計時の注意事項について紹介します。数十年にわたり研究が行われていますが、明確な設計ルールはなく、試行錯誤が続いています。ただし、工程をより管理しやすくするために従うべきガイドラインはあります。


デザインサポート

ASOのデザインにサポートが必要ですか?またはオンラインの注文ツールで修飾を見つけられませんか?メルクのテクニカルサービスチームがサポートいたします。customjp.ts@merckgroup.comまでリクエストをお送りください。

調節のメカニズム

従来のASOに基づく遺伝子調節(通常は遺伝子発現のサイレンシングまたは減少と同義ですが、遺伝子発現の向上に使用されることもあり、少なくともある特殊な事例では、遺伝子発現の増加をもたらすことが示されました)は、mRNAを標的とし、核または細胞質のいずれかで起こります。核内(mRNA前駆体が標的)では、調節は通常、ポリアデニル化1、スプライシングの変化2、ヌクレオチド間結合の切断3によって作用し、これらはいずれもmRNA成熟中に発生します(図1)。細胞質(成熟mRNAが標的)では、遺伝子調節は通常、切断を伴わない翻訳の変化4 、または切断3によって作用し、これらはいずれも翻訳直前/翻訳中に発生します(図2)。

核内におけるASOに基づく遺伝子調節のメカニズム

図1.核内におけるASOに基づく遺伝子調節のメカニズム哺乳類の場合、核内のgDNAはmRNA前駆体に転写される。核内の外因性ASOは、A)mRNA前駆体の3'端のポリアデニル化シグナルにハイブリダイズし、この部位でのポリアデニル化を阻害することによって、上流の別の部位にポリアデニル化を向け直し、遺伝子発現を増加1させるB)スプライス部位にハイブリダイズすることによって、スプライソソームの適切な集合を妨げ、エクソンスキッピングを引き起こすことにより、疾患遺伝子の発現を向上2させる(多くの人はこれを真のASOと考えておらず、多くの場合、splice switching oligonucleotides:[SSO]またはsteric blocking oligonucleotides:[SBO]と呼ばれる)C)エクソンまたはイントロン(この例ではイントロン)にハイブリダイズし、RNase Hによる切断3を引き起こす。ほとんどの場合、大幅な発現の増加、サイレンシング、変化が起こりますが、影響を受けていないmRNA前駆体のいくらかのプロセシングが起こり、続いて成熟mRNAが細胞質に搬出される可能性がある。S=ポリアデニル化シグナル配列(ここでは1つしか示していないが、1つの転写物に複数存在することもある)。

細胞質におけるASOに基づく遺伝子調節のメカニズム

図2.細胞質におけるASOに基づく遺伝子調節のメカニズム哺乳類の場合、核内のgDNAが、1)mRNA前駆体に転写され、2)mRNA前駆体がプロセシング(5'キャップと3'ポリ[A]テールの付加)およびスプライシング(イントロンの除去)を受けて、成熟mRNAが生成され、3)成熟mRNAが細胞質に搬出される。外因性ASOは細胞質内の成熟mRNAにハイブリダイズし、A)翻訳の変化、この場合は5'キャップにおけるリボソーム集合の阻害による翻訳抑制4を介して(これは真のASOではないとされることが多く、一般的にSBOの一例とされる)、またはB)RNase H(特にヒトのRNase H1)による切断3を介して、遺伝子発現を抑制する(減少させる)。ほとんどの場合、遺伝子発現は大幅に減少するが、それでも翻訳は発生する。

ASOは、ワトソン・クリック塩基対形成によって標的mRNAを認識し、ハイブリダイズします。RNase Hによる標的mRNAの切断(核内または細胞質内のいずれでも3)を引き起こすため、ASOは、研究および治療目的で幅広く検討されており、調節メカニズムについてよく理解されています。RNase H(特にヒトのRNase H1)は、マグネシウムイオンを補助因子として使用し、ヌクレオチド間(ホスホジエステル)結合の加水分解を介して、mRNA:DNAヘテロ二本鎖のmRNA鎖を切断します5。切断後、ASOはそのままである一方、元の結合が、分解したmRNAの5'および3'フラグメントそれぞれの遊離3'-ヒドロキシル基および5'-リン酸基となります。

設計の際の検討事項

原則として、遺伝子サイレンシングは、標的mRNA内の配列を選択し、相補的なワトソン・クリック塩基対を形成するASOをベンダーに発注し、ASOを検討中のシステム(in vitroまたはin vivo)に導入し、当該レポーターによる期待された作用を観察するだけの簡単な手順です。しかし、ASO設計に成功するためには、考慮に入れるべき事項が多数あります。

ハイブリダイゼーション部位

ワトソン・クリック塩基対形成の法則に従うと、ASOは標的mRNA配列のどの領域にもハイブリダイズするはずです。しかし、mRNAは折りたたまれて二次構造やあるいは三次構造をとることがあり、これらがASOのハイブリダイゼーションを妨げる可能性があります。そのため、mRNAの折りたたまれていない領域を、ハイブリダイゼーション部位として選択する必要があります。アクセス可能部位の予測に役立つRNase Hマッピングなどのウェットラボ手法がありますが6、RNAフォールディング予測アルゴリズム(mfoldなど)を試すことから始めることを推奨します。

折りたたまれていない領域を同定したら、その領域がスプライソソーム、リボソーム、タンパク質やその他の巨大分子集合体の結合部位として働くかどうか検討します。一般的に、5'キャップ、開始コドン、3'非翻訳領域/ポリAテールが適切な部位として選択されています7。ASOによりRNase Hが活性化されない場合であっても、mRNA成熟または翻訳に必要な装置が立体的に阻害されているため、やはりサイレンシングが発生すると考えられます。

ヌクレアーゼ分解

in vitroおよびin vivoにおいて、未修飾のDNA ASOはヌクレアーゼ活性によって、その有効性が急速に失われてしまいます。In vivoではエンドヌクレアーゼとエキソヌクレアーゼの両方が分解を引き起こす可能性がありますが8、エキソヌクレアーゼがその損傷の大部分の原因だと考えられます9,10。分解を防ぐためには、すべてのASOに、ヌクレアーゼ分解に抵抗するための化学修飾が必要です。多数の核酸アナログがASOの修飾に利用できますが5,11、ここでは、メルクの標準的修飾用製品に含まれるもののみご紹介します(表1)。

ASOの3つの領域(ヌクレオチド間結合、糖、塩基)が修飾を受けますが、下記では、修飾をその主な効果に従って分類します。ただし、複数の効果を有するものもいくつかあり、例えば、修飾Xの主な効果は結合親和性を向上させること、副次的効果は免疫刺激がもたらす有害な影響を軽減することです(このページの焦点は引き続き主な効果に合わせます)。

表1.ヌクレアーゼ分解の防止を主な目的として利用可能な修飾

ホスホロチオエートこの修飾は、第一世代と考えられる数少ない修飾とされていました。PS-ASOはヌクレアーゼ耐性を持つため、完全ネイティブなDNA ASOと比べて血漿中半減期が長くなります9。さらに、PS-ASOは、骨格の負電荷が保持されているため、細胞内に簡単に入りこみます11。興味深いことに、PSは、ヌクレアーゼ耐性よりも、輸送と細胞内への流入に大きな影響を及ぼすと考えられます12

しかし、PS-ASOはヌクレアーゼから完全に保護されるわけではなく、標的mRNAへのハイブリダイゼーションが低下しており(「結合親和性」の項を参照)、調節を維持するためには多くの量を投与しなければなりません11。加えて、PSは体内でタンパク質と相互作用し、それによって免疫系の活性などの望ましくない副作用(「免疫刺激」の項を参照)を引き起こす可能性があります11

Methyl RNAこの修飾は、第二世代と考えられる数少ない修飾とされていました。ASOにおいて、PSと組み合わせた2'-OMe-RNAは、PS単独の場合の利点を向上させること、つまり、ヌクレアーゼ耐性、血漿中半減期、組織内取り込みを増加させることがわかっています11

Methoxyethyl RNA2'-Me-RNAの誘導体である2'-O-methoxyethyl (2'-MOE)は近年、いくつかの既承認薬に含有されるようになってから人気を集めています23。他のリボヌクレオチドの2'修飾と同様に、2'-MOEがRNAターゲットと対になったときに二本鎖の安定性が強化されます。

Fluoro RNARNAの2'-水酸基をフッ素に置換すると、融解温度、化学的安定性、およびヌクレアーゼ耐性が大幅に増加します。

免疫刺激

細菌のDNAには、脊椎動物DNAと比較して、非メチルCpG(シトシン-ホスホジエステル結合-グアニン)ジヌクレオチドがはるかに高頻度に含まれています。これは、CpGジヌクレオチドが脊椎動物ゲノムには少数しか存在せず、その80%がメチル基で標識されていることが主な原因です13。細菌のCpGモチーフはB細胞、NK細胞、単球、サイトカインの活性化を引き起こす一方、脊椎動物のCpGモチーフはそのような活性化を引き起こさないことから、これは、免疫系が細菌感染を認識する方法の1つである可能性があります13。非メチル化CpG(CpsG:シトシン-ホスホロチオエート結合-グアニンはさらに強力です14)モチーフを有するASOは、細菌DNAと同様の方法で免疫系を刺激し、それまでのアンチセンス研究から報告されたいくつかの作用に関与していた可能性があります。

免疫刺激を回避するためには、可能であれば、CpG/CpsGモチーフをもたないASOを設計するか、少なくとも、最も強い免疫応答を引き起こす下記の拡張モチーフを有さないASOを設計する必要があります14

  • プリン-プリン-CpG-ピリミジン-ピリミジン

標的部位に選択する配列に相補性があるため、これを避けることは困難な場合があることを考慮すると、次に良い方法は、CpG/CpsGのシトシンを、免疫刺激を大幅に低下させることが示されている5′-メチルシトシンに置換することです(表2)15

表2.免疫刺激の防止を主な目的として利用可能な修復

配列長

最適な長さは通常12~28塩基です6。12塩基より短い配列では、非特異的ハイブリダイゼーションの可能性が高まり、25塩基より長い配列では、細胞内取込み低下の可能性が高まります6

自己相補性

ASOは、二次構造とオリゴヌクレオチド二量体の形成についてチェックする必要があります。いずれも、標的部位配列へのハイブリダイゼーションを妨げる可能性があるためです。できれば、ASOは可能な限り最も弱い二次構造をとるように、さらには二量体を形成しないように設計してください。メルクのオリゴヌクレオチド配列計算機OligoEvaluator™を使えば、これらの自己形成構造を迅速に決定することができます。

G-Quartet Structures

2つ以上のCまたはGヌクレオチド配列を含むASOは、まれな構造を形成することができ、それによって、望ましくないオフターゲット効果をもたらす可能性があります。最も一般的でよく研究されているのは、G-quartetsの形成を引き起こす可能性がある、G塩基の配列です16。これらのquartetsは、転写因子などのタンパク質に結合することが示されており17、アンチセンス活性を模倣することによって、阻害する可能性があります。

これらのquartetsの形成を回避するためには、可能であれば、そのようなポリG配列をもたないASOを設計してください。ここでも、実行可能でない場合があることを考えると、次に良い方法は、グアニンを7-デアザ-dGに置換することであり(表3)、これによりquartetの形成は阻止されます18

表3.G-quartet形成の防止を主な目的として利用可能な修復

機能モチーフ

PS-ASO実験の統計解析によって、以下のモチーフは、

  • CCAC
  • TCCC
  • ACTC
  • GCCA
  • CTCT

アンチセンス効率の向上に相関する一方、次のモチーフは、

  • GGGG
  • ACTG
  • AAA
  • TAA

アンチセンス活性を低下させることが見出されました19。RNase H活性は、配列非依存性であることがわかっているため20、これらのモチーフによる強化は、GCのワトソン・クリック塩基対形成の優位性によって、mRNA:ASOヘテロ二本鎖の熱力学的安定性を高めると考えられます。

結合親和性

すでに述べたように、標的mRNA内で折りたたみのない部位を同定すること、さらには、ASOに有害な自己相補性もないようにすることが、きわめて重要です。しかし、これらの配慮のみでは、適切なハイブリダイゼーションを確実に行うために十分とはいえません。PSなどのさまざまな因子が、ASOの標的部位への結合親和性を低下させる可能性があり11、さらにはアンチセンス有効性を最低下させます。

第三世代のASO修飾は、ヌクレアーゼ耐性だけでなく、結合親和性の向上ももたらすことがわかっています。制約のある環状構造を有するLocked Nucleic Acid™(表4)は、ASOの結合親和性と有効性の向上に特に有用です(単量体付加当たりの融解温度変化は、ネイティブDNAのみの場合と比較して+3℃から+11℃までさまざまです21)。

表4.ASO結合親和性の向上のために利用可能な修飾

コンストラクト

ASO配列に関する情報をお伝えするために、承認されているまたは臨床試験が行われているいくつかのアンチセンス薬の実例(多くの場合、アンチセンス研究の推進を主要目的とします)を紹介します。これらの薬剤は、アンチセンスに関して望まれる結果すべて、すなわち適切な設計、利用可能な送達メカニズム、効果的な調節が示された例です(臨床試験中の薬剤の場合はそれらが示されることが期待されているものです)。研究実験の成功には、結果の同一性がきわめて重要です(メルクのASOはin vitroおよびin vivo動物研究専用[RUO]です)。

第一世代1998年に初めて承認されたアンチセンス薬は、fomivirsen(商品名Vitravene)でした。この薬剤は、AIDS患者などの免疫不全患者におけるサイトメガロウイルス網膜炎(CMV)の治療に使用されました。これは、硝子体内注射によって投与されました。ヌクレオチド間結合がすべてPSの21merのASOで、以下の配列を有します。

  • G*C*G*T*T*T*G*C*T*C*T*T*C*T*T*C*T*T*G*C*G

            ○ * = PS

そしてCMV遺伝子UL123から転写されたmRNAの翻訳を阻害することによって機能します22。しかし、HIV治療としてHAART(高活性抗レトロウイルス療法)が開発され、CMV症例数が75%減少したことにより販売が低迷したため、最終的には市場から撤退しました。

PSのみのASOはヌクレアーゼから完全に保護されるわけではなく、標的mRNAへのハイブリダイゼーションが低下しており、調節を維持するには多くの量を継続的に投与しなければならず、タンパク質との相互作用により望ましくない副作用が生じる可能性があることから11、第一世代のコンストラクトは大部分が研究開発パイプラインにおいて放棄されています。

第二世代2013年に、mipomersen(商品名Kynamro)が2つ目の承認アンチセンス薬となりました。この薬剤は、遺伝性疾患である家族性高コレステロール血症の治療に使用されます。この薬剤は皮下注射によって投与されます。ヌクレオチド間結合がすべてPSの20 merのASOで、以下の配列を有します。

  • G*mC*mC*mU*mC*A*G*T*mC*T*G*mC*T*T*mC*G*mC*A*mC*mC

            ○ 下線 = 2'-O-MOE-RNA (MOEは2-メトキシエチル)

            ○ m=メチル(5-Me-dCおよび5-Me-U)

            ○ * = PS

アポリポタンパク質B-100 mRNAの翻訳を阻害することによって機能します23。重度肝障害のリスクがあるため、この薬剤はリスク管理計画に含まれていなければなりません。

Mipomersenなどの第二世代のアンチセンス分子は、5-10-5ギャップマー構造をとるように設計されています24。これは、上記の配列からわかります。つまり、5'および3'端の塩基5個(ヌクレアーゼ耐性を付与する/結合親和性を向上させる糖修飾)と、RNase Hの結合を可能にする標準的デオキシリボヌクレオチド10個(糖修飾なし)の中央ギャップからわかります11

この例では、末端が、2'-O-methyl RNA修飾の変異型である2'-O-MOE-RNA(MOEは2-メトキシエチル)で構成されます。

第三世代2017年、miravirsen(SPC3649)の第II相臨床試験が実施されています25C型肝炎(HCV)に対する治療として検討されています。  この薬剤は皮下注射によって投与されます。ヌクレオチド間結合がすべてPSの15 merのASOで、以下の配列を有します26

  • C*C*A*T*T*G*T*C*A*C*A*C*T*C*C

            ○ 下線 = LNA

            ○ * = PS

ヒトmiRNAのmiR-122にハイブリダイズすることによって機能します。これによって、miR-122がアルゴノートをHCV RNAの5'-UTR領域(通常アルゴノートが結合し、それによってヌクレアーゼ分解を防ぐ部位)に運ぶのを阻止します25。そのため、miravirsenはウイルスRNAの分解を引き起こします。

Miravirsenは、miRNAを標的とすることにより、間接的にのみmRNAを分解することから、従来のASOではありませんが、LNAを含む第三世代コンストラクトの最もよい例の1つであるため、こちらに掲載しています。

標的のチェック

最終の未修飾ASO配列は、BLAST検索を行い、非特異的ハイブリダイゼーション(発生しないことが望ましい)によって、アンチセンス活性が阻害されず、忍容できない毒性が発生しないことを確認する必要があります。

品質に関する検討事項

In vivo動物実験においては、ASOに対し、塩交換(ホスホラミダイト合成化学による毒性のアンモニウムイオンを生理的ナトリウムイオンに置換します)、エンドトキシン試験(発熱物質の存在量が許容限度未満であることを確認します)、ろ過(汚染CFU数を許容限度未満まで減少させます)によるin vivoグレードの精製を行うことが推奨されます。メルクのiScale Oligos™製品は、in vivo、高スループット、商用プロジェクト (ライフサイエンス研究ツール、分子診断、ラボ開発試験)用の、ミリグラム単位のカスタムオリゴヌクレオチドです。このような精製やこれらの追加サービスすべてとあわせてご注文いただけます。

送達性・毒性

このページには記載していませんが、さまざまな送達メカニズムや起こりうる毒性を論じた優れたレビュー論文がいくつかあります11,27,28,29,30

結論

お客様が実験で試したいと考えるASOを設計したときに、メルクはそれを合成することができます(メルクのASOはin vitroおよびin vivo動物研究専用[RUO]です)。さらにサポートが必要な場合、特に特殊な修飾を施したASOの製造の実現可能性につきましては、 customjp.ts@merckgroup.comにお問い合わせください。


参考文献

1.
Vickers TA. 2001. Fully modified 2' MOE oligonucleotides redirect polyadenylation. 29(6):1293-1299. https://doi.org/10.1093/nar/29.6.1293
2.
Kole R, Krainer AR, Altman S. 2012. RNA therapeutics: beyond RNA interference and antisense oligonucleotides. Nat Rev Drug Discov. 11(2):125-140. https://doi.org/10.1038/nrd3625
3.
Liang X, Sun H, Nichols JG, Crooke ST. 2017. RNase H1-Dependent Antisense Oligonucleotides Are Robustly Active in Directing RNA Cleavage in Both the Cytoplasm and the Nucleus. Molecular Therapy. 25(9):2075-2092. https://doi.org/10.1016/j.ymthe.2017.06.002
4.
Baker BF, Lot SS, Condon TP, Cheng-Flournoy S, Lesnik EA, Sasmor HM, Bennett CF. 1997. 2?-O-(2-Methoxy)ethyl-modified Anti-intercellular Adhesion Molecule 1 (ICAM-1) Oligonucleotides Selectively Increase the ICAM-1 mRNA Level and Inhibit Formation of the ICAM-1 Translation Initiation Complex in Human Umbilical Vein Endothelial Cells. J. Biol. Chem.. 272(18):11994-12000. https://doi.org/10.1074/jbc.272.18.11994
5.
Deleavey G, Damha M. 2012. Designing Chemically Modified Oligonucleotides for Targeted Gene Silencing. Chemistry & Biology. 19(8):937-954. https://doi.org/10.1016/j.chembiol.2012.07.011
6.
Patil SD, Rhodes DG, Burgess DJ. 2005. DNA-based therapeutics and DNA delivery systems: A comprehensive review. AAPS J. 7(1):E61-E77. https://doi.org/10.1208/aapsj070109
7.
Goodchild J, Carroll E, Greenberg JR. 1988. Inhibition of rabbit ?-Globin synthesis by complementary oligonucleotides: Identification of mRNA sites sensitive to inhibition. Archives of Biochemistry and Biophysics. 263(2):401-409. https://doi.org/10.1016/0003-9861(88)90652-2
8.
Fisher TL, Terhorst T, Cao X, Wagner RW. 1993. Intracellular disposition and metabolism of fluorescently-labled unmodified and modified oligouncleotides microijjected into mammalian cells. Nucl Acids Res. 21(16):3857-3865. https://doi.org/10.1093/nar/21.16.3857
9.
EDER PS, DeVINE RJ, DAGLE JM, WALDER JA. 1991. Substrate Specificity and Kinetics of Degradation of Antisense Oligonucleotides by a 3? Exonuclease in Plasma. Antisense Research and Development. 1(2):141-151. https://doi.org/10.1089/ard.1991.1.141
10.
DAGLE JM, WEEKS DL, WALDER JA. 1991. Pathways of Degradation and Mechanism of Action of Antisense Oligonucleotides inXenopus laevisEmbryos. Antisense Research and Development. 1(1):11-20. https://doi.org/10.1089/ard.1991.1.11
11.
Mansoor M, Melendez AJ. 2008. Advances in Antisense Oligonucleotide Development for Target Identification, Validation, and as Novel Therapeutics. Gene?Regul Syst Bio. 2GRSB.S418. https://doi.org/10.4137/grsb.s418
12.
Khvorova A, Watts JK. 2017. The chemical evolution of oligonucleotide therapies of clinical utility. Nat Biotechnol. 35(3):238-248. https://doi.org/10.1038/nbt.3765
13.
Weiner GJ, Liu H, Wooldridge JE, Dahle CE, Krieg AM. 1997. Immunostimulatory oligodeoxynucleotides containing the CpG motif are effective as immune adjuvants in tumor antigen immunization. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94(20):10833-10837. https://doi.org/10.1073/pnas.94.20.10833
14.
KRIEG AM, MATSON S, FISHER E. 1996. Oligodeoxynucleotide Modifications Determine the Magnitude of B Cell Stimulation by CpG Motifs. Antisense and Nucleic Acid Drug Development. 6(2):133-139. https://doi.org/10.1089/oli.1.1996.6.133
15.
Henry S, Stecker K, Brooks D, Monteith D, Conklin B, Bennett C. 2000. Chemically modified oligonucleotides exhibit decreased immune stimulation in mice.. J Pharmacol Exp Ther. 292468-79. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10640282/
16.
Williamson JR, Raghuraman M, Cech TR. 1989. Monovalent cation-induced structure of telomeric DNA: The G-quartet model. Cell. 59(5):871-880. https://doi.org/10.1016/0092-8674(89)90610-7
17.
Tam R, Lin C, Lim C, Pai B, Stoisavljevic V. 1999. Inhibition of CD28 expression by oligonucleotide decoys to the regulatory element in exon 1 of the CD28 gene.. J Immunol. 1634292-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10510368/
18.
Murchie A, Lilley D. 1994. Tetraplex folding of telomere sequences and the inclusion of adenine bases.. The EMBO Journal. 13(4):993-1001. https://doi.org/10.1002/j.1460-2075.1994.tb06344.x
19.
Matveeva OV. 2000. Identification of sequence motifs in oligonucleotides whose presence is correlated with antisense activity. 28(15):2862-2865. https://doi.org/10.1093/nar/28.15.2862
20.
Ho S. 1996. Potent antisense oligonucleotides to the human multidrug resistance-1 mRNA are rationally selected by mapping RNA-accessible sites with oligonucleotide libraries. 24(10):1901-1907. https://doi.org/10.1093/nar/24.10.1901
21.
Wahlestedt C, Salmi P, Good L, Kela J, Johnsson T, Hokfelt T, Broberger C, Porreca F, Lai J, Ren K, et al. 2000. Potent and nontoxic antisense oligonucleotides containing locked nucleic acids. Proceedings of the National Academy of Sciences. 97(10):5633-5638. https://doi.org/10.1073/pnas.97.10.5633
22.
Mulamba GB, Hu A, Azad RF, Anderson KP, Coen DM. 1998. Human Cytomegalovirus Mutant with Sequence-Dependent Resistance to the Phosphorothioate Oligonucleotide Fomivirsen (ISIS 2922). Antimicrob. Agents Chemother.. 42(4):971-973. https://doi.org/10.1128/aac.42.4.971
23.
Geary RS, Baker BF, Crooke ST. 2015. Clinical and Preclinical Pharmacokinetics and Pharmacodynamics of Mipomersen (Kynamro®): A Second-Generation Antisense Oligonucleotide Inhibitor of Apolipoprotein B. Clin Pharmacokinet. 54(2):133-146. https://doi.org/10.1007/s40262-014-0224-4
24.
Liang X, Sun H, Nichols JG, Crooke ST. 2017. RNase H1-Dependent Antisense Oligonucleotides Are Robustly Active in Directing RNA Cleavage in Both the Cytoplasm and the Nucleus. Molecular Therapy. 25(9):2075-2092. https://doi.org/10.1016/j.ymthe.2017.06.002
25.
Titze-de-Almeida R, David C, Titze-de-Almeida SS. 2017. The Race of 10 Synthetic RNAi-Based Drugs to the Pharmaceutical Market. Pharm Res. 34(7):1339-1363. https://doi.org/10.1007/s11095-017-2134-2
26.
Gebert LFR, Rebhan MAE, Crivelli SEM, Denzler R, Stoffel M, Hall J. 2014. Miravirsen (SPC3649) can inhibit the biogenesis of miR-122. 42(1):609-621. https://doi.org/10.1093/nar/gkt852
27.
Chan JH, Lim S, Wong WF. 2006. ANTISENSE OLIGONUCLEOTIDES: FROM DESIGN TO THERAPEUTIC APPLICATION. Clin Exp Pharmacol Physiol. 33(5-6):533-540. https://doi.org/10.1111/j.1440-1681.2006.04403.x
28.
Godfrey C, Desviat LR, Smedsrød B, Piétri?Rouxel F, Denti MA, Disterer P, Lorain S, Nogales?Gadea G, Sardone V, Anwar R, et al. 2017. Delivery is key: lessons learnt from developing splice?switching antisense therapies. EMBO Mol Med. 9(5):545-557. https://doi.org/10.15252/emmm.201607199
29.
Sun Y, Zhao Y, Zhao X, Lee RJ, Teng L, Zhou C. Enhancing the Therapeutic Delivery of Oligonucleotides by Chemical Modification and Nanoparticle Encapsulation. Molecules. 22(10):1724. https://doi.org/10.3390/molecules22101724
30.
Krhac Levacic A, Morys S, Wagner E. 2017. Solid-phase supported design of carriers for therapeutic nucleic acid delivery. 37(5): https://doi.org/10.1042/bsr20160617
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