Přejít k obsahu
Merck
DomůVýzkum rakovinyBarviva Atto pro špičkové fluorescenční zobrazování

Barviva Atto pro špičkové fluorescenční zobrazování

Aktivovaná fluorescenční barviva se běžně používají ke značení proteinů, nukleových kyselin a dalších biomolekul pro použití v přírodovědných aplikacích včetně fluorescenční mikroskopie, průtokové cytometrie, fluorescenční in situ hybridizace (FISH), testů vazby receptorů a enzymových testů. Barviva Atto jsou řadou fluorescenčních barviv, která splňují kritické potřeby moderních fluorescenčních technologií:

  • Stabilita - Atto 655 a Atto 647N jsou fotostabilní a vysoce odolné vůči degradaci ozonem, takže jsou ideální pro aplikace na mikročipech. Viz související článek "Analýza vlastností fluorescenčních barviv používaných pro značení DNA v experimentech s mikročipy".
  • Dlouhá doba života signálu - Doba rozpadu signálu 0,6-4,1 nanosekundy umožňuje časově omezit autofluorescenční pozadí a rozptyl.
  • Snížené pozadí - Několik Atto barviv má excitační vlnové délky větší než 600 nm, což snižuje fluorescenci pozadí ze vzorků, Rayleighův a Ramanův rozptyl.
  • Výběr - Atto barviva mají silné fluorescenční signály, které pokrývají viditelné a blízké IR emisní vlnové délky.

Dlouhá doba života signálu Atto barviv

Atto barviva vykazují delší dobu života fluorescenčního signálu (0,6-4,1 ns) ve vodném roztoku než karbocyaninová barviva nebo většina autofluorescence vlastní buňkám a biomolekulám. Signál z Atto barviv lze měřit pomocí pulzní laserové excitace s časově řízeným detekčním systémem, aby se snížily interference fluoroforů s kratší dobou života, autofluorescence pozadí a Rayleighova a Ramanova rozptylu světla, což zvyšuje celkovou citlivost.

Dlouhé excitační vlnové délky snižují pozadí

Bylo prokázáno, že excitace diodovým laserem při vlnové délce 635 nm a červeně absorbující fluorescenční barviva snižují autofluorescenci biologických vzorků natolik, že lze detekovat jednotlivé molekuly antigenů a protilátek ve vzorcích lidského séra.1,2 Excitace v červené spektrální oblasti také snižuje poškození buněk při práci s živými buňkami.3

Mnoho barviv Atto (Atto 590 a vyšší) lze excitovat pomocí vlnových délek větších než 600 nm. Použití barviv Atto aktivovaných dlouhou vlnovou délkou ve spojení s vhodnou excitační vlnovou délkou snižuje autofluorescenci způsobenou vzorkem, rozpouštědlem, sklem nebo polymerním nosičem a zlepšuje celkovou citlivost při biologických analýzách a zobrazovacích technikách. Fluorescence na pozadí způsobená Rayleighovým a Ramanovým rozptylem se použitím excitace s delší vlnovou délkou rovněž výrazně snižuje.

Rozsah vlnových délek od 479 do 764 nm pro fluorescenční multiplexní detekci

Barviva Atto mají silné fluorescenční signály, přičemž většina z nich má hodnoty molární absorptivity >100 000 a nízký překryv excitace/emise, což činí barviva Atto ideálními pro multiplexní techniky využívající viditelné a blízké IR emisní vlnové délky.

S maximy excitačního signálu v rozmezí 390 až 740 nm a dobrou separací Stokesova posunu existují Atto barviva vhodná pro použití s jakýmkoli běžným zdrojem excitačního světla.

Fluorescenční multiplexní detekce pomocí Atto barviv

Atto barviva lze použít ke konjugaci sond a biomolekul pro multiplexní aplikace. Výběr dvou Atto barviv s oddělenými emisními signály podporuje vícenásobnou excitaci a výsledky měření z jediného experimentu.

Fluorescenční multiplexní detekce pomocí konjugátů s barvivy Atto protilátek

Imunoblotová detekce proteinu 1 a proteinu 2 pomocí dvou primárních protilátek

Imunoblotová detekce proteinu 1 a proteinu 2 pomocí dvou primárních protilátek a dvou konjugátů barviva anti-IgG-Atto. Zobrazování bylo prováděno postupně pomocí laserového skeneru Fuji® FLA-3000, nejprve při excitační vlnové délce 532 nm s emisním filtrem 580 nm, poté při excitační vlnové délce 633 nm s emisním filtrem 675 nm. Překrytí obrazu bylo provedeno pomocí softwarového nástroje.

Alternativy k běžným fluoroforům

Díky širokému výběru dostupných Atto barviv lze použít jakýkoli běžný zdroj excitačního světla a Atto barviva mohou nahradit jiná fluorescenční barviva běžně používaná v přírodních vědách.

Reaktivní atobarviva a konjugáty

Atobarviva vytvářejí intenzivní fluorescenční signály díky silné absorbanci a vysokým kvantovým výtěžkům. Barviva jsou k dispozici v následujících formátech:

  • Barviva s volnou kyselinou pro všechny běžné barvicí aplikace
  • NHS-estery pro použití v běžných konjugačních protokolech
  • Maleimidy pro použití při spojování se skupinami obsahujícími thiol, jako jsou cysteinové zbytky a thiol (-).SH) přidávané během automatické syntézy
  • Konjugují se s biotinem, streptavidinem a protilátkami

Atto 655, Atto 680 a Atto 700 jsou zhášeny guanosinem, tryptofanem a příbuznými sloučeninami prostřednictvím přímého kontaktu mezi barvivem a zhášecím činidlem a pomocí procesu přenosu elektronů. Fluorescenční zhášení barviv tryptofanovými zbytky v bílkovinách bylo použito k rozlišení nevázaných (nefluorescenčních) bílkovin od interakcí mezi bílkovinou a protilátkou (fluorescenčních).1

Výhodné konjugáty Atto Dye

K dispozici je rozsáhlý výběr konjugátů a sad Atto Dye, včetně:

  • Sady pro značení proteinů
    • Atto 488 je lepší alternativou fluoresceinu a Alexa Fluor 488, vytváří konjugáty s větší fotostabilitou a jasnější fluorescencí.
    • Atto 550 je alternativou k rhodaminovým barvivům Cy3 a Alexa Fluor 550, která nabízí intenzivnější jas a vyšší fotostabilitu.
    • Atto 594 je alternativou k Alexa Fluor 594 a texaské červené.
    • Atto 647N je mimořádně vysoce fluorescenční barvivo a Atto 655 jsou alternativami k Cy5 a Alexa Fluor 647.
    • Atto 647N je mimořádně vysoce fluorescenční barvivo.
    • Atto 633 je alternativou k Alexa Fluor 633.
  • Lektiny pro studie vazby sacharidů.
  • Primární a sekundární protilátky pro přímou a nepřímou ELISA, imunoblotting, imunohistochemii a další aplikace identifikace proteinů.
  • Biotin a streptavidin pro konjugaci avidin / streptavidin / biotin v aplikacích včetně ELISA, imunohistochemie, in situ hybridizace a průtokové cytometrie.
Fluorescenční mikroskopie řezu lidské kožní tkáně

Fluorescenční mikroskopie řezu lidské kožní tkáně (fixované v parafínu) s plísňovou infekcí. Cílový sacharid chitotrióza patogenních hub se specificky váže na lektin z konjugátu Phytolacca americana Atto 488 (zeleně). Jádra jsou protibarvena DAPI (modře). Obrázek: J. Zbären, Inselspital, Bern.

Protein p38 MAPK značený His

Protein p38 MAPK s jeho značkou (500 ng - 25 ng) byl separován na 4-20% Tris-glycinovém SDS-PAGE gelu. Po fixaci a promytí byl gel inkubován s Ni-NTA-Atto 647N (1:1000) ve tmě. Gel byl promyt a poté zobrazen pomocí laserového skeneru FLA-3000 Fuji® s excitačním filtrem 633 nm a emisním filtrem 675 nm pro Ni-NTA-Atto 647N (λex 647 nm, λem 669 nm). Pomocí fluorescenčního zobrazování je pozorován pás 50 ng His značeného p38-MAPK.

Fosfolipidy značené barvivem Atto

Fosfolipidy jsou hlavními stavebními prvky biologických membrán. Výzkum biologických membrán (např. intracelulárních membrán živých buněk, plazmatických membrán) se stal hlavní oblastí zájmu. Nabízíme řadu fluorescenčně značených fosfolipidů. Optické vlastnosti vybrané řady barviv umožňují použití se všemi běžně používanými nastaveními excitačních a emisních filtrů. Nabízíme řadu fosfolipidů na bázi glycerolu nesoucího jednu nebo dvě mastné kyseliny (lipofilní skupiny) a fosfátový monoesterový zbytek (hydrofilní skupina), jako je 1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-fosfoetanolamin (DPPE), 1,2-dioleoylsn-glycero-3-fosfoetanolamin (DOPE), 1-palmitoyl-2-hydroxy-snglycero-3-fosfoetanolamin (PPE) a 1,2-dimyristoyl-sn-glycero-3-fosfoetanolamin (DMPE). Fluorofory jsou kovalentně vázány na hydrofilní hlavovou skupinu fosfolipidů.

Materiály
Loading

Odkazy

1.
Neuweiler H, Schulz A, Vaiana AC, Smith JC, Kaul S, Wolfrum J, Sauer M. 2002. Detection of Individual p53-Autoantibodies by Using Quenched Peptide-Based Molecular Probes. Angew. Chem. Int. Ed.. 41(24):4769-4773. https://doi.org/10.1002/anie.200290044
2.
Sauer M, Zander C, Müller R, Ullrich B, Drexhage K, Kaul S, Wolfrum J. 1997. Detection and identification of individual antigen molecules in human serum with pulsed semiconductor lasers. Applied Physics B: Lasers and Optics. 65(3):427-431. https://doi.org/10.1007/s003400050292
3.
Sauer M, Zander C, Müller R, Ullrich B, Drexhage K, Kaul S, Wolfrum J. 1997. Detection and identification of individual antigen molecules in human serum with pulsed semiconductor lasers. Applied Physics B: Lasers and Optics. 65(3):427-431. https://doi.org/10.1007/s003400050292
4.
Widengren J, Schweinberger E, Berger S, Seidel CAM. 2001. Two New Concepts to Measure Fluorescence Resonance Energy Transfer via Fluorescence Correlation Spectroscopy:  Theory and Experimental Realizations. J. Phys. Chem. A. 105(28):6851-6866. https://doi.org/10.1021/jp010301a
5.
Buschmann V, Weston KD, Sauer M. 2003. Spectroscopic Study and Evaluation of Red-Absorbing Fluorescent Dyes. Bioconjugate Chem.. 14(1):195-204. https://doi.org/10.1021/bc025600x
6.
Widengren J, Schwille P. 2000. Characterization of Photoinduced Isomerization and Back-Isomerization of the Cyanine Dye Cy5 by Fluorescence Correlation Spectroscopy. J. Phys. Chem. A. 104(27):6416-6428. https://doi.org/10.1021/jp000059s
Chcete-li pokračovat, musíte se přihlásit.

Abyste mohli pokračovat ve čtení, přihlaste se nebo vytvořte účet.

Nemáte účet?