Stratégie simple d'enrichissement des protéines par ultrafiltration
Le protéome plasmatique humain constitue une vaste ressource pour découvrir de nouveaux biomarqueurs et les étudier. La chromatographie par filtration sur gel est la méthode traditionnellement utilisée pour fractionner les solutions de protéines en fonction de leurs tailles1,2. La filtration sur gel est toutefois laborieuse, limitée par le volume des échantillons et chronophage. Elle dilue également beaucoup l'échantillon. Ces limitations peuvent être surmontées par l'ultrafiltration, qui a été appliquée dans la littérature3–5 comme méthode de préparation d'échantillons pour obtenir des fractions de faible poids moléculaire (< 10 kDa) en vue de l'analyse de biomarqueurs. Ici, des dispositifs Amicon® Ultra ont servi à purifier du cytochrome c à partir d'un mélange contenant 10 % de sérum de veau fœtal.
Méthode
Dans cette expérience, des dispositifs d'ultrafiltration ont été employés pour enrichir des fractions de faible poids moléculaire (LMW) et de poids moléculaire élevé (HMW) issues de sérum. En adoptant une approche par filtration en série (Figure 1), les protéines ont été fractionnées en diminuant progressivement le seuil de coupure (MWCO) de dispositifs Amicon® Ultra de 4 ml avec un MWCO allant de 100 kDa à 10 kDa.
Résultats
Cette stratégie d'enrichissement en série a permis de compartimenter les protéines et d'améliorer le débit par rapport à la filtration directe avec un dispositif de faible MWCO (Figure 2 ci-dessus). La pureté des échantillons préparés en suivant la stratégie d'enrichissement était aussi plus élevée qu'avec la filtration directe classique (Figure 3 ci-dessus). Les données montrent que l'ultrafiltration en série est une approche viable pour l'enrichissement des protéines en fonction de leur taille.
Références bibliographiques
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