Zaloguj się, aby wyświetlić ceny organizacyjne i kontraktowe.
Wybierz wielkość
Zmień widok
| Rozmiar/SKU | Dostępność | Cena netto |
|---|---|---|
1 ea | Przewidywany termin wysyłki15 października 2027zKuehne + Nagel Sp. z o.o. | 2540,00 zł |
Informacje o tej pozycji
NACRES:
NA.71
UNSPSC Code:
12352207
Manufacturer/tradename:
Sigma-Aldrich
Packaging:
pkg of 1 plates
2540,00 zł
Przewidywany termin wysyłki15 października 2027Szczegóły
Pomoc techniczna
Potrzebujesz pomocy? Nasz zespół doświadczonych naukowców chętnie Ci pomoże.
Pozwól nam pomócpackaging
pkg of 1 plates
manufacturer/tradename
Sigma-Aldrich
growth mode
N/A
technique(s)
cell culture | mammalian: suitable
shipped in
ambient
storage temp.
15-25°C
General description
Płytka hydrożelowa TrueGel3D® HTS to gotowe do użycia rozwiązanie do łatwego tworzenia hodowli komórkowych 3D z wykorzystaniem w pełni syntetycznych hydrożeli w prosty i kompatybilny z automatyzacją sposób. 96-dołkowe płytki ze szklanym dnem z polistyrenu zawierają prefabrykowane syntetyczne funkcjonalizowane hydrożele na bazie PEG. Te innowacyjne hydrożele zawierają stopniowo zwiększającą się gęstość sieciowania w całej studzience. Użytkownicy mogą przystąpić bezpośrednio do wysiewu komórek bez konieczności przygotowywania hydrożelu lub etapów enkapsulacji. Po wysianiu komórek, będą one stopniowo infiltrować hydrożel i w ciągu kilku dni stworzą środowisko hodowli komórkowej 3D. Co więcej, ta nowo zaprojektowana powierzchnia hydrożelu daje użytkownikowi możliwość sekwencyjnego tworzenia systemów ko-kultury, w których różne populacje komórek są wysiewane w różnych punktach czasowych w tym samym hydrożelu.
Referencje
Benjamin R Simona. Soft Hydrogels Featuring In-Depth Surface Density Gradients for the Simple Establishment of 3D Tissue Models for Screening Applications. SLAS Discov. 2017 Jun;22(5):635-644.
Referencje
Benjamin R Simona. Soft Hydrogels Featuring In-Depth Surface Density Gradients for the Simple Establishment of 3D Tissue Models for Screening Applications. SLAS Discov. 2017 Jun;22(5):635-644.
Application
Czystość płytki: Liczba cząstek/basenik pod mikroskopem <10.
Przezroczystość hydrożelu: Pass
Grubość hydrożelu: Pass
Analiza mikrobiologiczna: Negatywny dla mikroorganizmów zgodnie z ISO 11737-1.
Przezroczystość hydrożelu: Pass
Grubość hydrożelu: Pass
Analiza mikrobiologiczna: Negatywny dla mikroorganizmów zgodnie z ISO 11737-1.
Protokoły
Ogólny protokół posiewu komórek i utrzymania hodowli Uwaga: Przed rozpoczęciem należy sprawdzić stan płytki. Woreczek polietylenowy (PE) musi być nienaruszony, bez widocznego płynu wewnątrz. Płytka musi być nienaruszona wewnątrz woreczka. Woreczek PE należy otworzyć nożyczkami lub skalpelem w sterylnym laminarnym stole przepływowym. Po wyjęciu z torebki płytka jest nadal uszczelniona od góry polipropylenową (PP) folią samoprzylepną, która utrzymuje zawartość wewnątrz każdej z 96 studzienek. Od strony szklanego dna należy sprawdzić, czy szklana pokrywa jest nienaruszona i czy żele wyglądają na przezroczyste, tak jakby studzienki były wypełnione wodą.
1. Ogrzać płytkę testową. Upewnij się, że płytka była w temperaturze pokojowej przez co najmniej 30 minut przed użyciem.
2. Przygotuj komórki i pożywkę do użycia.
3. Usunąć samoprzylepną folię uszczelniającą. Ostrożnie odklej taśmę uszczelniającą od płytki testowej. Sugerujemy, aby mocno przytrzymać płytkę lewą ręką na stole i odkleić folię uszczelniającą prawą ręką, zaczynając od prawego górnego kąta płytki i powoli przesuwając się do lewego dolnego kąta płytki. Z powodu podciśnienia wywieranego podczas zdejmowania folii, na górze dołków może utworzyć się menisk cieczy, ale menisk ten odskoczy i zniknie w ciągu kilku sekund.
4. Zassać bufor do przechowywania. Włożyć końcówkę pipety do dołka i opuścić ją wzdłuż ściany bocznej. Umieść końcówkę pipety na plastikowym pierścieniu wewnątrz studzienki i ostrożnie zassij przechowywany bufor soli fizjologicznej. Niewielki opór przy zasysaniu jest zjawiskiem normalnym. Lekko unieś końcówkę pipety, a ciecz zostanie zassana. Uwaga: Nie dotykaj ani nie odsysaj bezpośrednio nad żelem, ponieważ istnieje ryzyko jego uszkodzenia. Możliwe jest użycie pipet wielokanałowych lub pomp (niskie ciśnienie ssania) w celu przyspieszenia procesu. Dopuszczalne jest pozostawienie pewnej ilości buforu do przechowywania w studzience, ponieważ jest to bufor Tris, który nie wpłynie negatywnie na rozwój hodowli. Zminimalizować czas pomiędzy krokiem 4. i 5. w celu zmniejszenia ryzyka wysuszenia żelu.
5. Dodaj komórki i pożywkę. Dodaj zawiesinę komórek o maksymalnej objętości 200 μL do każdego dołka. Przenieść płytkę do inkubatora. Utrzymuj komórki w hodowli i zmieniaj pożywkę co 2 dni, stosując podobne techniki pipetowania jak w krokach 4 i 5, aby stworzyć środowisko hodowli komórek 3D. Uwaga: Pozostała śladowa aktywność trypsyny może spowodować trawienie hydrożelu. Zwłaszcza w przypadku stosowania pożywek bez surowicy, po odłączeniu komórek należy zahamować trypsynę za pomocą inhibitorów trypsyny lub roztworów inaktywujących (np. soi). Optymalna gęstość wysiewu komórek zależy od typów hodowli i odczytów. Aby lepiej kontrolować stężenie składników pożywki, możliwe jest namoczenie i przepłukanie hydrożelu pożywką przed dodaniem komórek.
6. Sekwencyjne wysiewanie komórek (opcjonalnie) W wybranym punkcie czasowym usuń pożywkę i dodaj drugą populację komórek w pożywce do ko-kultury (maksymalna objętość 200 μL na studzienkę). Przechowywać w hodowli do końca testu. Zmieniaj pożywkę co drugi dzień.
Ogólny protokół posiewu komórek i utrzymania hodowli Uwaga: Przed rozpoczęciem należy sprawdzić stan płytki. Woreczek polietylenowy (PE) musi być nienaruszony, bez widocznego płynu wewnątrz. Płytka musi być nienaruszona wewnątrz woreczka. Woreczek PE należy otworzyć nożyczkami lub skalpelem w sterylnym laminarnym stole przepływowym. Po wyjęciu z torebki płytka jest nadal uszczelniona od góry polipropylenową (PP) folią samoprzylepną, która utrzymuje zawartość wewnątrz każdej z 96 studzienek. Od strony szklanego dna należy sprawdzić, czy szklana pokrywa jest nienaruszona i czy żele wyglądają na przezroczyste, tak jakby studzienki były wypełnione wodą.
1. Ogrzać płytkę testową. Upewnij się, że płytka była w temperaturze pokojowej przez co najmniej 30 minut przed użyciem.
2. Przygotuj komórki i pożywkę do użycia.
3. Usunąć samoprzylepną folię uszczelniającą. Ostrożnie odklej taśmę uszczelniającą od płytki testowej. Sugerujemy, aby mocno przytrzymać płytkę lewą ręką na stole i odkleić folię uszczelniającą prawą ręką, zaczynając od prawego górnego kąta płytki i powoli przesuwając się do lewego dolnego kąta płytki. Z powodu podciśnienia wywieranego podczas zdejmowania folii, na górze dołków może utworzyć się menisk cieczy, ale menisk ten odskoczy i zniknie w ciągu kilku sekund.
4. Zassać bufor do przechowywania. Włożyć końcówkę pipety do dołka i opuścić ją wzdłuż ściany bocznej. Umieść końcówkę pipety na plastikowym pierścieniu wewnątrz studzienki i ostrożnie zassij przechowywany bufor soli fizjologicznej. Niewielki opór przy zasysaniu jest zjawiskiem normalnym. Lekko unieś końcówkę pipety, a ciecz zostanie zassana. Uwaga: Nie dotykaj ani nie odsysaj bezpośrednio nad żelem, ponieważ istnieje ryzyko jego uszkodzenia. Możliwe jest użycie pipet wielokanałowych lub pomp (niskie ciśnienie ssania) w celu przyspieszenia procesu. Dopuszczalne jest pozostawienie pewnej ilości buforu do przechowywania w studzience, ponieważ jest to bufor Tris, który nie wpłynie negatywnie na rozwój hodowli. Zminimalizować czas pomiędzy krokiem 4. i 5. w celu zmniejszenia ryzyka wysuszenia żelu.
5. Dodaj komórki i pożywkę. Dodaj zawiesinę komórek o maksymalnej objętości 200 μL do każdego dołka. Przenieść płytkę do inkubatora. Utrzymuj komórki w hodowli i zmieniaj pożywkę co 2 dni, stosując podobne techniki pipetowania jak w krokach 4 i 5, aby stworzyć środowisko hodowli komórek 3D. Uwaga: Pozostała śladowa aktywność trypsyny może spowodować trawienie hydrożelu. Zwłaszcza w przypadku stosowania pożywek bez surowicy, po odłączeniu komórek należy zahamować trypsynę za pomocą inhibitorów trypsyny lub roztworów inaktywujących (np. soi). Optymalna gęstość wysiewu komórek zależy od typów hodowli i odczytów. Aby lepiej kontrolować stężenie składników pożywki, możliwe jest namoczenie i przepłukanie hydrożelu pożywką przed dodaniem komórek.
6. Sekwencyjne wysiewanie komórek (opcjonalnie) W wybranym punkcie czasowym usuń pożywkę i dodaj drugą populację komórek w pożywce do ko-kultury (maksymalna objętość 200 μL na studzienkę). Przechowywać w hodowli do końca testu. Zmieniaj pożywkę co drugi dzień.
Features and Benefits
Kultura komórkowa 3D
Preparation Note
Wszystkie elementy płytki hydrożelowej TrueGel3D® HTS należy przechowywać w temperaturze pokojowej (nie zamrażać) z dala od bezpośrednich źródeł światła i ciepła. Nie przechowywać do góry nogami.
Legal Information
TRUEGEL3D is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Disclaimer
O ile nie określono inaczej w naszym katalogu lub innej dokumentacji firmy dołączonej do produktu(-ów), nasze produkty są przeznaczone wyłącznie do użytku badawczego i nie mogą być wykorzystywane do żadnych innych celów, w tym między innymi do nieautoryzowanych zastosowań komercyjnych, zastosowań diagnostycznych in vitro, zastosowań terapeutycznych ex vivo lub in vivo lub jakiegokolwiek rodzaju konsumpcji lub zastosowania u ludzi lub zwierząt.
Ta strona może zawierać tekst przetłumaczony maszynowo.
Klasa składowania
11 - Combustible Solids
Co się dzieje?
WGK 1
Temperatura zapłonu (°F)
Not applicable
Temperatura zapłonu (°C)
Not applicable
Wybierz jedną z najnowszych wersji:
Masz już ten produkt?
Dokumenty związane z niedawno zakupionymi produktami zostały zamieszczone w Bibliotece dokumentów.