559304
Anti-SAPK/JNK Rabbit pAb
liquid, Calbiochem®
About This Item
Productos recomendados
origen biológico
rabbit
Nivel de calidad
forma del anticuerpo
affinity isolated antibody
tipo de anticuerpo
primary antibodies
clon
polyclonal
Formulario
liquid
no contiene
preservative
reactividad de especies
mouse, rat, human
fabricante / nombre comercial
Calbiochem®
condiciones de almacenamiento
OK to freeze
avoid repeated freeze/thaw cycles
isotipo
IgG
Condiciones de envío
wet ice
temp. de almacenamiento
−20°C
modificación del objetivo postraduccional
unmodified
Información sobre el gen
human ... MAPK8(5599)
Descripción general
Inmunógeno
Aplicación
Immunocytochemistry (1:200)
Advertencia
Forma física
Reconstitución
Nota de análisis
UV treated HEK293 cells
Otras notas
Coso, O.A., et al. 1995. Cell81, 1137.
Derijard, B., et al. 1994. Cell76, 1025.
Kyriakis, J.M., et al. 1994. Nature369, 156.
Hibi, M., et al. 1993. Genes Dev.7, 2135.
Kyriakis, J.M. and Avruch, J. 1990. J. Biol. Chem.265, 17355.
Recommended Protocol for Immunoblotting
Solutions and Reagents
•Transfer Buffer: 25 mM Tris base, 0.2 M glycine, 20% methanol, pH 8.5.
•SDS Sample Buffer: 62.5 mM Tris-HCl, pH 6.8, 2% SDS, 10% glycerol, 50 mM DTT, 0.1% bromphenol blue.
•10X TBS (Tris-buffered saline): To prepare 1 liter, 24.2 g Tris base, 80 g NaCl, adjust pH to 7.6 with HCl. Dilute 1:10 for use.
•Blocking Buffer: 1X TBS, 0.1% Tween®-20 detergent with 5% non-fat dry milk.
•Primary Antibody Dilution Buffer: 1X TBS, 0.1% Tween-20 detergent with 5% BSA
•Wash Buffer (TBST): 1X TBS, 0.1% Tween-20 detergent
Blotting Membrane
Nitrocellulose or PVDF membranes may be used.
Protein Blotting
A general protocol for sample preparation using 2x106 293 cells per well in a 6-well plate is as follows:
1. Aspirate media. Treat cells by adding fresh media containing regulator for desired time.
2. Aspirate media from cultures; wash cells with PBS; aspirate.
3. Lyse cells by adding 100 µl of SDS Sample Buffer and immediately scrape the cells off the plate and transfer the extract to a microfuge tube. Keep on ice.
4. Sonicate for 2 s to shear DNA and reduce sample viscosity.
5. Heat sample to 95-100°C for 5 min. Cool on ice.
6. Microcentrifuge for 5 min.
7. Load 20 µl onto SDS-PAGE gel (10 cm x 10 cm).
8. Electrotransfer to nitrocellulose membrane.
As controls, we recommend using 20 µl lysate from UV treated HEK293 cell.
Membrane Blocking, Gel and Antibody Incubations
1. After transfer, wash membrane with 25 ml TBS for 5 min at room temperature.
2. Incubate membrane in 25 ml Blocking Buffer for 1-3 h at room temperature or overnight at 4°C.
3. Wash 3 times for 5 min each with 15 ml TBST.
4. Incubate membrane and primary antibody (at the appropriate dilution) in 10 ml Primary Antibody Dilution Buffer with gentle agitation overnight at 4°C.
5. Wash 3 times for 5 min each with 15 ml TBST.
6. Incubate membrane with conjugated secondary antibody at the appropriate dilution in 10 ml Blocking Buffer with gentle agitation for 1 h at room temperature.
7. Wash membrane as in step 5.
Detection of Proteins
Chemiluminescence.
Información legal
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Código de clase de almacenamiento
10 - Combustible liquids
Clase de riesgo para el agua (WGK)
WGK 1
Certificados de análisis (COA)
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