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Blue-White 스크리닝 및 Colony Selection군집 형성 프로토콜

재조합형 세균 식별

Blue-White 스크리닝은 재조합형 세균 식별을 위한 빠르고 효율적인 기법입니다. 이 방법은 대장균에서 발생하는 효소인 β-갈락토시다아제의 활성에 의존하며, 이 효소는 락토오스를 포도당과 갈락토오스로 분리합니다.

LacZ 유전자 교란

주변 환경에 락토오스가 존재하면 대장균의 LacZ 오페론(operon)이 트리거됩니다. 이 오페론 활동은 락토오스를 대사시키기 위한 β-갈락토시다아제 효소를 생성하는 결과를 가져옵니다. 대부분의 플라스미드 벡터는 β-갈락토시다아제의 첫 146개의 아미노산에 대한 코딩 정보를 포함하는 lacZ 유전자의 짧은 부분을 가지고 있습니다. 사용된 숙주 대장균 균주는 lacZΔM15 삭제 돌연변이를 포함하는 유능한 세포입니다. α-보완 프로세스로 인해 플라스미드 벡터가 그러한 세포에 의해 점유되면 기능적인 β-갈라토시다아제 효소가 생성됩니다.

복제에 사용되는 플라스미드 벡터는 이 α-보완 프로세스가 재조합의 마커 역할을 하도록 조작됩니다. MCS(다중 복제 부위)는 플라스미드 벡터의 lacZ 시퀀스 내에 존재합니다. 이 염기서열은 외부 DNA를 삽입하기 위해 제한 효소에 의해 잘려나갈 수 있습니다. 외래 DNA를 포함하는 플라스미드 벡터가 숙주 대장균에 의해 흡수될 때, α-보완이 일어나지 않으므로 기능적 β-갈락토시다아제 효소는 생성되지 않습니다. 외래 DNA가 벡터에 삽입되지 않거나 MCS가 아닌 다른 위치에 삽입되면 플라스미드 벡터의 lacZ 유전자가 숙주 대장균의 lacZ 삭제 돌연변이를 보완해 기능성 효소를 생성합니다.

Blue-White 스크리닝은 어떤 방법으로 작동합니까?

재조합형 DNA를 포함하는 클론을 선별하기 위해 X-gal이라고 알려진 색소성 기질을 한천 플레이트에 첨가합니다. β-갈락토시다아제가 생성되면 X-gal은 가수분해되어 5-bromo-4-chloro-indoxyl를 형성하며, 이는 자연적으로 희미해져 5,5’-dibromo-4,4’-dichloro-indigo라고 불리는 불용성 푸른 색소를 생성합니다. 비재조합 세포에 의해 형성된 군집은 파란색으로 나타나는 반면 재조합형 세포는 흰색으로 나타납니다. 원하는 재조합 집단을 쉽게 선택하고 배양할 수 있습니다.

IPTG(Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside)는 X-gal과 함께 Blue-White 스크리닝에 사용됩니다. IPTG는 lacZ 유전자의 발현을 유도하는 갈락토오스의 비대사성 유사형(analog)입니다. IPTG는 β-갈락토시다아제의 기질이 아니라 유도자일 뿐이라는 점에 유의해야 합니다. 육안 검사를 위해서는 X-gal과 같은 색소성 기질이 필요합니다.

Blue-White 스크리닝에 사용할 수 있는 전형적인 플라스미드 벡터를 개략적으로 표현한 것입니다.

그림 1.Blue-White 스크리닝에 사용할 수 있는 전형적인 플라스미드 벡터를 개략적으로 표현한 것입니다.

일반적인 Blue-White 스크리닝 절차를 개략적으로 표현한 것입니다.

그림 2.일반적인 Blue-White 스크리닝 절차를 개략적으로 표현한 것입니다.

Blue-White 스크리닝 제품(재료)

blue-white screening을 위한 프로토콜

blue-white screening을 위한 전체 프로토콜에는 다음 3가지 중요한 단계가 포함됩니다.

  • 접합: 플라스미드 벡터의 MCS에 대한 외래 DNA의 결합
  • 변환: 유력한 대장균에 외부 DNA 삽입을 포함한 플라스미드 벡터 도입
  • 선별: 재조합형 세균 군집 식별을 위한 청백 선별법

접합

머크는 일과성 발현 체계뿐만 아니라 안정적 발현 체계에도 사용할 수 있는 다음과 같은 즉시 사용 가능한 발현 벡터를 공급합니다. 이 FLAG-융합 구조는 박테리아 세포와 포유류 세포 모두에서 번식하기 위한 복제개시점을 가지고 있습니다.

필요한 재료

다음은 접합에 대한 반응 설정입니다.

  • 위의 모든 구성 요소를 깨끗한 반응 튜브에 추가합니다.
  • 25 °C에서 30분간 배양합니다(유전자 증폭기에서 수행 가능).
  • PCR 정화 칼럼을 사용하여 DNA를 정제하고 약 50 μL 정도 용출하십시오.
  • 접합 제품의 0.1-10 ng을 벡터와 호환되는 화학적 또는 전기 관련 세포로 변환합니다.

변환(Transformation)

변환 절차에는 고품질의 플라스미드가 필수적으로 필요합니다. 다음 키트는 변환에 적합한 분리 및 정화를 위한 고품질 플라스미드입니다.

화학적 세포 또는 전기 관련 세포를 이용한 변환의 자세한 프로토콜은 여기에서 확인할 수 있습니다.

기본 정보

머크는 재조합형 박테리아 선별 검사를 돕는 다양한 색소성 기질을 공급합니다. 일부 제품은 LB 한천 플레이트(스크린 프로토콜 1)에서 확산하는 데 사용될 수 있으며, 다른 제품은 미생물 배지(스크린 프로토콜 2)에 통합되어 있습니다. 제품이 필요한 곳이면 어디든 IPTG와 함께 사용할 수 있습니다. 두 가지 모든 절차를 위한 프로토콜은 아래를 참조하십시오.

스크리닝 프로토콜 1(제품 번호 B6650, 16658, B2904, B3928, 16669B8931에 해당)

  • 무균 스프레더를 사용하여 LB 한천 플레이트에 색소성 기질 40 μL 또는 적정량의 IPTG 용액 10 μL를 바릅니다(제품 번호 B3928은 이미 IPTG가 포함되어 있으므로 사용 시 IPTG를 추가할 필요가 없습니다).
  • 플레이트에는 적절한 항생제가 포함되어야 하며, 항생제가 없는 경우 적절히 제어해야 합니다.
  • 플레이트는 덮개를 약간 연 상태로 층류 유동 챔버에서 건조하십시오.
  • 변형된 대장균 세포 10-100 μL를 멸균 스프레더로 LB 한천 플레이트에 도포합니다.
  • 37 °C에서 24-48시간 동안 플레이트를 배양합니다.
  • 한천 표면에 청백색 군집이 나타납니다. 배양할 흰색 군집에서 재조합형 세포를 선택합니다.

스크리닝 프로토콜 2 (제품 번호 S7313, S9811, C4478에 해당)

  • 무균 플라스크에서 적절한 분말, 한천, 용수의 무게를 재고 LB 한천을 제조합니다. 또는 적절한 양의 C4478의 무게를 재고 멸균 플라스크에 물을 붓습니다.
  • 배지에 제품 번호 S7313과 S9811 300 mg/L, 구연산 철 암모늄(제품 번호 F5879) 500 mg/L를 첨가한 후 오토클레이브 안에서 처리합니다. C4478을 사용하는 경우에는 이 단계를 진행하지 마십시오.
  • 배지를 오토클레이브 처리하고 플라스크를 취급할 수 있을 정도로 충분히 식힙니다.
  • 선택된 항생제를 적절한 농도로 매체에 첨가합니다.
  • 약 25-30 mL의 LB 한천을 무균 플레이트에 붓고 뚜껑을 약간 열어 둡니다.
  • 변형된 대장균 세포 10-100 μL를 멸균 스프레더로 LB 한천 플레이트에 도포합니다.
  • 37 °C에서 24-48시간 동안 플레이트를 배양합니다.
  • 한천 표면에 청백색 군집이 나타납니다. 배양할 흰색 군집에서 재조합형 세포를 선택합니다.
X-gal을 이용한 재조합형 세균의 청백색 선택

그림 3.X-gal을 이용한 재조합형 세균의 청백색 선택

Blue-white screening의 한계

  • Blue-white screening은 선별 절차에 해당하며 선택 기법은 아닙니다.
  • 벡터의 lacZ 유전자는 때때로 비기능적일 수 있으며 β-갈락토시다아제를 생성하지 않을 수 있습니다. 그 결과 군집을 재조합하지 않고서 흰색으로 나타날 수 있습니다.
  • 작은 염기서열의 외래 DNA가 MCS에 삽입되어 lacZ 유전자의 판독 틀을 바꿀 가능성도 있습니다. 이는 거짓의 양성 백색 군락을 만들게 됩니다.
  • β-갈락토시다아제는 부분적으로만 활성화되기 때문에 lacZ의 판독 프레임 내에 작은 삽입 개체가 있으면 불분명한 흐린 청색 군집을 생성할 수 있습니다.

참고문헌

1.
Sambrook J, Fritsch E, Maniatis T. 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press.
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