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E2264

Sigma-Aldrich

Endoglycosidase F3 from Elizabethkingia miricola

recombinant, expressed in E. coli, 30 U/mg

Synonyme(s) :

Elizabethkingia miricola, Endo-β-N-acetylglucosaminidase F3, Endoglycosidase F3 from Elizabethkingia (Chryseobacterium/Flavobacterium) meningosepticum

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About This Item

Numéro de classification (Commission des enzymes):
Numéro MDL:
Code UNSPSC :
12352204
Nomenclature NACRES :
NA.32

Produit recombinant

expressed in E. coli

Niveau de qualité

Conjugué

(N-linked)

Forme

solution

Activité spécifique

30 U/mg

Poids mol.

32 kDa

Conditions d'expédition

wet ice

Température de stockage

2-8°C

Application

Endoglycosidase F3 from Elizabethkingia miricola has been used to analyze core fucosylation and tryptic digests of serum proteins.

Actions biochimiques/physiologiques

Endoglycosidase F3 belongs to the glycoside hydrolase family 18 (GH18). It has hydrolytic activity. Endoglycosidase F3 glycosylates α-1,6-fucosylated GlcNAc derivative to give natural, core fucosylated complex-type N-glycopeptides.
Cleaves asparagine-linked biantennary and triantennary complex, oligosaccharides depending on the state of core fucosylation and peptide linkage.

Conditionnement

Supplied with 5× Reaction Buffer, 250 mM sodium acetate, pH 4.5

Définition de l'unité

One unit will release N-linked oligosaccharides from 1 μmole of denatured porcine fibrinogen in 1 minute at 37 °C, pH 4.5.

Forme physique

Aseptically filled solution in 20 mM Tris-HCl, pH 7.5

Code de la classe de stockage

10 - Combustible liquids

Classe de danger pour l'eau (WGK)

WGK 1

Point d'éclair (°F)

Not applicable

Point d'éclair (°C)

Not applicable

Équipement de protection individuelle

Eyeshields, Gloves, multi-purpose combination respirator cartridge (US)


Certificats d'analyse (COA)

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Liwei Cao et al.
Nature communications, 13(1), 3910-3910 (2022-07-08)
Core fucosylation of N-linked glycoproteins has been linked to the functions of glycoproteins in physiological and pathological processes. However, quantitative characterization of core fucosylation remains challenging due to the complexity and heterogeneity of N-linked glycosylation. Here we report a mass
Advances in Carbohydrate Chemistry (2016)
Chemical Biology of Glycoproteins (2017)
Characterization of novel endo-beta-N-acetylglucosaminidases from Sphingobacterium species, Beauveria bassiana and Cordyceps militaris that specifically hydrolyze fucose-containing oligosaccharides and human IgG
Huang Y, et al.
Scientific reports, 8(1), 246-246 (2018)
Quantitative analysis of core fucosylation of serum proteins in liver diseases by LC-MS-MRM
Ma J, et al.
Journal of proteomics, 189, 67-74 (2018)

Articles

Explore strategies for releasing N-linked glycans with PNGase F, PNGase A & native & sequential deglycosylation with endoglycosidases & exoglycosidases.

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