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Análisis de la actividad enzimática

Diagrama que ilustra la escisión enzimática en la que interviene BACE 1 y la extinción de la fluorescencia. Se representan tres etapas: (1) Dador de fluorescencia conectado a un aceptor atenuante, (2) escisión enzimática por BACE 1 y (3) aumento de la fluorescencia debido a la eliminación del atenuador.

Figura 1.Representación del proceso de análisis de la actividad enzimática que comienza con un donante de fluorescencia y un aceptor atenuante en un sustrato que pasa por la escisión enzimática para eliminar el atenuador, mostrando un aumento de la actividad fluorescente que indica que hay actividad enzimática.

Los análisis de la actividad enzimática los realizan predominantemente los investigadores para identificar la presencia o la cantidad de una enzima específica en un organismo, tejido o muestra. Ejemplos de dichas enzimas son la α-amilasa, la catalasa, la laccasa, la peroxidasa, la lisozima y las enzimas reporteras fosfatasa alcalina y luciferasa. Se encuentran ampliamente disponibles diversos reactivos y metodologías que permiten la investigación de interacciones enzima-sustrato específicas. La selección de una secuencia de trabajo apropiada depende de la sensibilidad que requiera el investigador. Las soluciones colorimétricas son útiles para la detección, mientras que los reactivos fluorescentes son más adecuados para la cuantificación de la actividad enzimática.



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Primer plano en el que se observan varias placas de Petri llenas de un medio líquido de color rosa. En primer término, una pipeta dispensa un líquido rojo en una de las placas de Petri. El fondo muestra más placas de Petri y el ambiente sugiere un entorno estéril y controlado típico de la investigación biológica.
Disociación de los tejidos

Recursos, protocolos y una completa oferta de enzimas fiables y ampliamente caracterizadas, como la tripsina, la colagenasa, la papaína, las nucleasas (ADNasa y ARNasa), la hialuronidasa, la elastasa y la proteasa XIV, para disociación de los tejidos y desprendimiento celular.

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Dos personas en un laboratorio que llevan n batas blancas de laboratorio. Una persona mira por un microscopio.
Enzimas y sustratos de detección

Los sustratos y las enzimas son cruciales en la investigación en ciencias de la vida, a la vez como herramientas y como objetivos en los sistemas de detección. Descubra los sistemas de detección enzimática de proteínas para ELISA, inmunohistoquímica, inmunoelectrotransferencia y muchos más con nuestra diversa cartera de sustratos y enzimas de detección.

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Un frasco marrón, lleno de las enzimas β-glucuronidasa y sulfatasa, y su envase. El envase es predominantemente blanco con elementos de diseño azules. Incluye texto, un código de barras y un logotipo circular amarillo en la parte superior.
Enzimas para análisis farmacológico

Enzimas de análisis farmacológico, como la β-glucuronidasa (beta-glucuronidasa) y la sulfatasa para estudios de metabolismo y de cribado de medicamentos

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Estructura molecular tridimensional de una enzima con sus coenzimas. El modelo incluye varias estructuras coloreadas que representan distintas partes de las moléculas, con hélices en tonos azules y verdes, láminas en amarillo y rojo, y representaciones en varillas en varios colores que indican distintos átomos, representando las coenzimas.
Coenzimas

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Determinación de las condiciones óptimas para la actividad enzimática

Si bien se han descrito numerosos análisis enzimáticos, esos procedimientos deben modificarse en función de los requisitos específicos de la enzima que se esté investigando. La actividad específica de una enzima depende de numerosos factores, como el pH, la temperatura, la fuerza iónica y la concentración de todos los componentes en el ensayo. Para condiciones como el pH, la actividad enzimática suele recordar a una campana de Gauss. La mayor actividad a un pH específico se indica como la Vmáx, observándose una disminución de la actividad a ambos extremos de la curva. Algunas enzimas pueden precisar consideraciones añadidas para compuestos que no intervienen directamente en la reacción, como los iones metálicos, los detergentes y las moléculas hidrófobas.

Determinación de las condiciones óptimas para la actividad enzimática

Si bien se han descrito numerosos análisis enzimáticos, esos procedimientos deben modificarse en función de los requisitos específicos de la enzima que se esté investigando. La actividad específica de una enzima depende de numerosos factores, como el pH, la temperatura, la fuerza iónica y la concentración de todos los componentes en el ensayo. Para condiciones como el pH, la actividad enzimática suele recordar a una campana de Gauss. La mayor actividad a un pH específico se indica como la Vmáx, observándose una disminución de la actividad a ambos extremos de la curva. Algunas enzimas pueden precisar consideraciones añadidas para compuestos que no intervienen directamente en la reacción, como los iones metálicos, los detergentes y las moléculas hidrófobas.

Componentes de los análisis enzimáticos

Para muchas enzimas, el agua es el disolvente estándar ya que corresponde al mismo entorno acuoso encontrado en las células. Sin embargo, en algunos casos, cuando las enzimas o los componentes enzimáticos son insolubles en agua, se utilizan disolventes orgánicos. Además, los sustratos y los cofactores son también componentes fundamentales en los análisis de la actividad enzimática. Los sustratos y los cofactores suelen identificarse por sus funciones en condiciones fisiológicas. Como tales, sustratos y cofactores interaccionan ampliamente y pueden ser requeridos por una diversa variedad de enzimas. Las disoluciones tampón y los iones son otros elementos fundamentales que considerar ya que son esenciales para estabilizar el pH durante todo el análisis e influyen directamente en la actividad de la enzima. Por ejemplo, pueden necesitarse iones metálicos monovalentes o divalentes para la actividad catalítica de los cofactores en la reacción y son esenciales para la actividad enzimática.

Realización de un análisis enzimático

La preparación de los componentes del análisis enzimático es un primer paso práctico. En general, es conveniente preparar una gran mezcla de ensayo descartando un componente activador para evitar errores de pipeteo que son inherentes al pipetear volúmenes pequeños. Una vez preparada la mezcla, los investigadores añadirán el componente activador final a la mezcla para iniciar el análisis de actividad. El pretratamiento de la enzima conservándola a temperaturas frías y a menudo agregando varios aditivos químicos o proteicos, es un factor crucial para asegurar la estabilidad de la enzima y su actividad máxima antes del inicio del ensayo. Una vez combinados los materiales de reacción en un recipiente de observación, los componentes deben mezclarse completa y rápidamente para que la reacción empiece. El registro de los datos debe iniciarse de inmediato después de la mezcla y la señal detectable debe representarse durante todo el tiempo que dure la reacción.

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