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AccueilApplicationsBiologie des protéinesDosage de l'activité enzymatique

Dosage de l'activité enzymatique

Schéma illustrant le clivage enzymatique impliquant BACE 1 et une extinction de fluorescence. Trois étapes sont décrites : (1) donneur doué de fluorescence relié à un accepteur capable d'extinction, (2) clivage enzymatique par BACE 1 et (3) augmentation de la fluorescence par suppression de l'extinction.

Figure 1.Représentation du fonctionnement d'un dosage d'activité enzymatique commençant avec un donneur doué de fluorescence et un accepteur capable d'extinction sur un substrat qui subit un clivage enzymatique pour éliminer l'extincteur, montrant une augmentation de l'activité fluorescente qui signale l'existence d'une activité enzymatique.

Les tests de dosage de l'activité enzymatique sont principalement réalisés par les chercheurs pour détecter la présence d'une enzyme donnée ou la quantifier dans un organisme, un tissu ou un échantillon. Voici quelques exemples de ces enzymes : l'α-amylase, la catalase, la laccase, la peroxydase, le lysozyme et les enzymes rapporteuses phosphatase alcaline et luciférase. Il existe une multitude de réactifs et de techniques qui permettent d'étudier les interactions entre des enzymes et des substrats donnés. Le choix d'une solution de dosage adaptée dépendra de la sensibilité attendue par le chercheur. Si les solutions colorimétriques sont utiles pour la détection, les réactifs fluorescents sont mieux adaptés à la quantification de l'activité enzymatique.



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Vue en gros plan de plusieurs boîtes de Pétri remplies d'un milieu liquide rose. Au premier plan, une pipette verse un fluide rouge dans l'une des boîtes de Pétri. L'arrière-plan comprend d'autres boîtes de Pétri et le cadre environnant évoque un lieu stérile et maîtrisé, typique de la recherche biologique.
Dissociation des tissus

Retrouvez des protocoles et des ressources pour la dissociation des tissus et le détachement des cellules, ainsi qu'une offre complète d'enzymes fiables et très bien caractérisées, notamment la trypsine, la collagénase, la papaïne, les nucléases (DNase et RNase), l'hyaluronidase, l'élastase et la protéase XIV.

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Deux personnes dans un laboratoire, portant des blouses blanches, l'une regardant dans un microscope.
Enzymes et substrats de détection

Les substrats et les enzymes sont essentiels dans la recherche en sciences de la vie, à la fois comme outils et comme cibles dans les systèmes de détection. Explorez notre catalogue d'enzymes et de substrats de détection et découvrez des systèmes de détection de protéines à base d'enzymes pour les tests ELISA, l'immunohistochimie, le western blotting et bien d'autres techniques.

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Flacon brun, rempli de β-glucuronidase et de sulfatase (deux enzymes), et son emballage. L'emballage est principalement blanc avec des éléments décoratifs bleus. Il comprend du texte, un code-barres et un logo circulaire jaune sur le dessus.
Enzymes pour l'analyse de drogues et de médicaments

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Structure moléculaire tridimensionnelle d'une enzyme et de ses coenzymes. Le modèle comprend plusieurs structures colorées représentant les différentes parties des molécules, avec les hélices en bleu et en vert, les feuillets en jaune et en rouge, et des représentations en bâtons pour les coenzymes en plusieurs couleurs indiquant les différents atomes.
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Détermination des conditions optimales à l'activité enzymatique

Si de nombreux dosages enzymatiques sont décrits dans la littérature, il est nécessaire de modifier ces procédures pour s'adapter aux particularités de l'enzyme étudiée. L'activité propre à une enzyme dépend de nombreux facteurs, notamment le pH, la température, la force ionique et la concentration de tous les constituants du test. Pour des conditions comme le pH, l'activité enzymatique suit souvent à une courbe en cloche. L'activité maximale à un pH donné est notée Vmax et on observe une décroissance de l'activité aux deux extrémités de la courbe. Certaines enzymes peuvent nécessiter la prise en compte d'autres facteurs pour des composants non directement impliqués dans la réaction, comme les ions métalliques, les détergents et les molécules hydrophobes.

Détermination des conditions optimales à l'activité enzymatique

Si de nombreux dosages enzymatiques sont décrits dans la littérature, il est nécessaire de modifier ces procédures pour s'adapter aux particularités de l'enzyme étudiée. L'activité propre à une enzyme dépend de nombreux facteurs, notamment le pH, la température, la force ionique et la concentration de tous les constituants du test. Pour des conditions comme le pH, l'activité enzymatique suit souvent à une courbe en cloche. L'activité maximale à un pH donné est notée Vmax et on observe une décroissance de l'activité aux deux extrémités de la courbe. Certaines enzymes peuvent nécessiter des considérations supplémentaires pour les composants qui ne sont pas directement impliqués dans la réaction, tels que les ions métalliques, les détergents et les molécules hydrophobes.

Composants du dosage enzymatique

Pour de nombreuses enzymes, le solvant standard est l'eau, car elle crée le même environnement aqueux que celui que l'on retrouve dans les cellules. Il arrive cependant que des solvants organiques soient utilisés lorsque les enzymes ou les constituants enzymatiques ne sont pas solubles dans l'eau. Les substrats et les cofacteurs (catalyseurs de réactions enzymatiques) sont également des constituants clés d'un test enzymatique. Ces substrats et cofacteurs sont souvent identifiés d'après leurs fonctions dans des conditions physiologiques. Par conséquent, les substrats et les cofacteurs interagissent largement et de multiples enzymes peuvent en avoir besoin. Les tampons et les ions sont d'autres éléments clés à prendre en compte, car ils sont essentiels pour stabiliser le pH tout au long du dosage et influencent directement l'activité enzymatique. Par exemple, des ions métalliques monovalents et divalents peuvent être nécessaires à l'activité catalytique des cofacteurs de la réaction et sont essentiels à l'activité enzymatique.

Réalisation d'un dosage enzymatique

La préparation des constituants du test enzymatique est une première étape concrète. Il est généralement utile de préparer une grande quantité de mélange de dosage, en excluant un constituant activateur, pour éviter les erreurs de pipetage inhérentes au pipetage de petits volumes. Une fois le mélange préparé, les chercheurs ajouteront le constituant activateur final au mélange pour initier le dosage de l'activité enzymatique. Le prétraitement de l'enzyme par conservation à basse température et souvent l'ajout de divers additifs chimiques ou protéiques sont des facteurs déterminants pour garantir la stabilité de l'enzyme et une activité maximale avant le début du dosage. Une fois les différents constituants du mélange réactionnel réunis dans un récipient d'observation, ils doivent être rapidement et soigneusement mélangés pendant que la réaction commence. L'enregistrement des données doit débuter juste après le mélange et le tracé de la courbe du signal détectable doit correspondre à l'intégralité de la durée de la réaction.

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